魔芋无硫干燥技术的研究
|
摘要
魔芋是天南星科魔芋属多年生草本植物，主要分布在亚洲和非洲的热带及亚热带的一些国家和地区。亚洲国家栽培较为普遍．全世界约有170种，我国有21种，其中至少13种为我国特有。魔芋初加工过程中由于去皮和切片导致组织细胞破裂，使细胞内的化学成分在酶的作用下发生作用，迅速产生褐变，引起外观色泽的变化，降低魔芋干片的商品价值，进一步影响魔芋精加工产品的外观和商品价值。为了抑制魔芋脱水烘烤中引起的褐变，魔芋初加工过程中普遍采用熏硫的方法，这种方法烘烤出来的魔芋角或魔芋片虽然颜色白，但是不好控制魔芋角或片中残留SO_2的含量，超过国标和行标1～2倍，严重影响我国的魔芋粉在国际市场上的竞争能力，并且不利与人体健康和引起环境污染。本文以万源花芋和白魔芋为研究材料，比较两个品种魔芋在室温贮藏过程中的多酚氧化酶活性的变化情况以及总酚含量的变化情况，两个品种的多酚氧化酶种类的不同，分析比较两个品种的酶促褐变的底物，探讨魔芋多酚氧化酶的部分特性，并选择几种安全无毒的单因子抑制剂和几种组合抑制剂来处理脱水烘烤前的魔芋，控制褐变的发生，并确定抑制剂的最佳浓度，烘烤出无硫无公害的安全的魔芋角或魔芋片。研究结果如下：
1．选用分光光度法测定多酚氧化酶活性和褐变强度，FoLin法测定总酚类物质含量的结果，魔芋采收后室温贮藏过程中同一时期内，白魔芋的多酚氧化酶活性低于万源花芋的多酚氧化酶活性，白魔芋球茎中的总酚类物质的含量高于万源花芋的总酚类物质的含量，白魔芋的褐变强度弱于万源花芋的褐变强度。
2．选用褐变产物的紫外波长扫描来比较确定白魔芋和万源花芋引起褐变的酶的底物的结果，两个品种的褐变产物扫描波峰和多巴胺标准物的褐变产物波峰都出现在300nm附近。说明两种魔芋品种的褐变底物同样可能是多巴胺。
3．选用浓缩胶浓度为4.5％，分离胶浓度7.5％的聚丙烯酰胺凝胶电泳来分离白魔芋和万源花芋球茎的酶，利用特殊的底物染色方法显现酶带的结果表明。白魔芋和万源花芋的酶条带出现在同一水平线上。说明两种魔芋品种引起褐变的酶是同一种酶。
4．温度、pH值、几个不同浓度梯度的抑制剂对魔芋多酚氧化酶活性影响的研究结果表明，白魔芋多酚氧化酶活力的最适温度为35℃左右，万源花芋多酚氧化酶活力的最适温度为30℃左右，100℃以上的温度保温30min后多酚氧化酶的相对活力，白魔芋降低95％，万源花芋降低99.5％；魔芋多酚氧化酶最适pH值为5或5.5左右，pH值2.2以下和8以上时会完全丧失其活力；植酸浓度6‰以上，L-半胱氨酸浓度各达到0.04‰以上和0.07‰以上，柠檬酸浓度各达到9‰以上和10‰以上，抗坏血酸浓度各达到0.1‰以上和0.12‰以上时白魔芋和万源花芋基本丧失PPO活力。
5．选用四种单因子抑制剂和几种组合抑制剂处理后，在60℃烘烤的结果为，L-半胱氨酸浓度0.01％、柠檬酸浓度3％和植酸浓度0.5％的单因子抑制剂浸泡5分钟后，白魔芋的烘烤效果都能达到所需白度，0.5％以上浓度的L-半胱氨酸抑制剂浸泡5分钟后，万源花芋烘烤效果能达到所需白度；0.35％浓度的L-半胱氨酸和1％浓度的柠檬酸两组分组合抑制剂浸泡5分钟
西南农业大学2004届硕士学位论文
中文摘要
后，万源花芋烘烤效果能达到所需白度;0.15%浓度的L一半肤氨酸、1%浓度的柠檬酸和2%
浓度植酸，0.15%浓度的L一半肤氨酸、3%浓度的柠檬酸和0.03%浓度的抗坏血酸，0.15%浓度
的L一半肤氨酸、0.05%浓度的抗坏血酸和l%浓度的植酸三种三组分组合抑制剂浸泡5分钟后，
万源花芋烘烤效果都能达到所需白度;0.15%浓度的L一半肤氨酸、l%浓度的柠檬酸、l%浓度
的植酸和0.01%浓度的抗坏血酸四组分组合抑制剂浸泡5分钟后，万源花芋烘烤效果能达到
所需白度。
6.上述处理对魔芋产品的葡甘露聚糖的含量和粘度值基本不会带来不利的影响。
7.对所处理的抑制剂成本进行计算的结果:白魔芋采用0.01%浓度的L一半胧氨酸单因子
.抑制剂处理l吨魔芋时只增加23.86元的成本;万源花芋采用0，15%L一半胧氨酸+3%柠檬酸
+0 .03%抗坏血酸浓度的组合抑制剂处理1吨万源花芋时，增加402.3元的成本。其他抑制剂
的成本都比上述的成本高。
本研究方法规范可靠，所得结论可完全有效地应用于魔芋脱水烘烤生产中。
Amorphophallus Konjac is a herb of the Araceae Amorphophallus, which distributed mainly in some countries in the tropic and semitropical zone of the Asia and parts of the Africa, And it is very abundant in ous country. But a commonly encountered problem in the initial process of the Konjak when peeling off or sliceing up, is the brown stain. So this thesis performed a systemic research about the brown stain on it. Briefly, we took the Amorphophallus mairei (A.mairei) in wanyuan, and the A.white as the study material first, then we compared the changes of the polyphenol oxidases' activity and the total polyphenol in this two kinds of konjacs. Centred with the brown stain and the polyphenol's oxidadation, this paper has also carried out some other eperiments relevant them. The main contents and the results are as follows:
1. We took the spectrophotometre to measure the activity of the polyphenol oxidase and the extent of the brown stain, and the method of Folin to measure the content of the polyphenol, and the results shown that the extent of the decreasing of the white konjac's is lower than the A.mairei, when preservatived in normal temperature after the postharvest. And the quantity of the total polyphenol in white konjak's corm is higher than the A.mairei's. The extent of the white konjac's brown stain is less than that of A.mairei's.
2. When using the ultraviolet scan on the two konjac's brown stain of their substances, the wave peaks of them were at the same place with the dopamine. So the substances of their brown stain maybe a substance of the dopamines.
3. Using the gel electrophoresis of the condense concentration 4.5% and the separate concentration 7.5% of the polyacrylamide, to apart the two kinds of konjacs. Then according the same zone when coloration the gel electrophoresis, we got the conclusion that it's a same kind of enzymes leading to the brown stain in the two konjaks.
4. When we researched the influences of the temperature, the pH values,and the inhibitor of different concentrations on the activity of the polyphenol oxidase, the experents showed that the proper temperarure of the white konjak's polyphenol oxidase is about 35℃, whereas the other's 30 ℃ or so. When incubation 30min above 100℃, the activity of the white konjac is decreased by 95%, whereas the A.mairei decreased by 99.5%. The optimum pH values of the PPO (polyphenol oxidate) is 5~5.5, and below 2.2 or above 8 the activity is loss totally. And the activity of the PPO will loss in the gross when the concentration of the phytic acid is 6‰ above, and the concentration of the L-cysteine is above the 0.04‰~0.07‰, and the concentration of the citric acid is above 9‰ ~10‰, and the concentration of the ascorbic acid is above 0.1‰~0.12‰.
5. After adopting four single factor inhibitors and combined inhibitor in treating with the them, we roasted them at 60℃. Then the results showed that the white konjac can reach the acceptable white of color when the L-cysteine's concentration is 0.01%, and the citric acid is 3%, and the plant acid is 0.5%, make the white konjac diping in them 5min. whereas the A.mairei need the
L-cysteine's concentration reaching at 0.5% and diping in 5min .The concentration of the L-cysteine at abve 0.35%, and the citric acid 1%, then with the inhibitor together dip in 5min, the A.mairei 's color can be acceptable. And the concentration of L-cysteine 0.15%, the citric acid 1%, the phytic acid 2%, etc. Four groups can make the A.mairei reach the acceptable chroma.
6. We found that all the management above are reasonable also when taking the polyglucomannose into grant.
1．选用分光光度法测定多酚氧化酶活性和褐变强度，FoLin法测定总酚类物质含量的结果，魔芋采收后室温贮藏过程中同一时期内，白魔芋的多酚氧化酶活性低于万源花芋的多酚氧化酶活性，白魔芋球茎中的总酚类物质的含量高于万源花芋的总酚类物质的含量，白魔芋的褐变强度弱于万源花芋的褐变强度。
2．选用褐变产物的紫外波长扫描来比较确定白魔芋和万源花芋引起褐变的酶的底物的结果，两个品种的褐变产物扫描波峰和多巴胺标准物的褐变产物波峰都出现在300nm附近。说明两种魔芋品种的褐变底物同样可能是多巴胺。
3．选用浓缩胶浓度为4.5％，分离胶浓度7.5％的聚丙烯酰胺凝胶电泳来分离白魔芋和万源花芋球茎的酶，利用特殊的底物染色方法显现酶带的结果表明。白魔芋和万源花芋的酶条带出现在同一水平线上。说明两种魔芋品种引起褐变的酶是同一种酶。
4．温度、pH值、几个不同浓度梯度的抑制剂对魔芋多酚氧化酶活性影响的研究结果表明，白魔芋多酚氧化酶活力的最适温度为35℃左右，万源花芋多酚氧化酶活力的最适温度为30℃左右，100℃以上的温度保温30min后多酚氧化酶的相对活力，白魔芋降低95％，万源花芋降低99.5％；魔芋多酚氧化酶最适pH值为5或5.5左右，pH值2.2以下和8以上时会完全丧失其活力；植酸浓度6‰以上，L-半胱氨酸浓度各达到0.04‰以上和0.07‰以上，柠檬酸浓度各达到9‰以上和10‰以上，抗坏血酸浓度各达到0.1‰以上和0.12‰以上时白魔芋和万源花芋基本丧失PPO活力。
5．选用四种单因子抑制剂和几种组合抑制剂处理后，在60℃烘烤的结果为，L-半胱氨酸浓度0.01％、柠檬酸浓度3％和植酸浓度0.5％的单因子抑制剂浸泡5分钟后，白魔芋的烘烤效果都能达到所需白度，0.5％以上浓度的L-半胱氨酸抑制剂浸泡5分钟后，万源花芋烘烤效果能达到所需白度；0.35％浓度的L-半胱氨酸和1％浓度的柠檬酸两组分组合抑制剂浸泡5分钟
西南农业大学2004届硕士学位论文
中文摘要
后，万源花芋烘烤效果能达到所需白度;0.15%浓度的L一半肤氨酸、1%浓度的柠檬酸和2%
浓度植酸，0.15%浓度的L一半肤氨酸、3%浓度的柠檬酸和0.03%浓度的抗坏血酸，0.15%浓度
的L一半肤氨酸、0.05%浓度的抗坏血酸和l%浓度的植酸三种三组分组合抑制剂浸泡5分钟后，
万源花芋烘烤效果都能达到所需白度;0.15%浓度的L一半肤氨酸、l%浓度的柠檬酸、l%浓度
的植酸和0.01%浓度的抗坏血酸四组分组合抑制剂浸泡5分钟后，万源花芋烘烤效果能达到
所需白度。
6.上述处理对魔芋产品的葡甘露聚糖的含量和粘度值基本不会带来不利的影响。
7.对所处理的抑制剂成本进行计算的结果:白魔芋采用0.01%浓度的L一半胧氨酸单因子
.抑制剂处理l吨魔芋时只增加23.86元的成本;万源花芋采用0，15%L一半胧氨酸+3%柠檬酸
+0 .03%抗坏血酸浓度的组合抑制剂处理1吨万源花芋时，增加402.3元的成本。其他抑制剂
的成本都比上述的成本高。
本研究方法规范可靠，所得结论可完全有效地应用于魔芋脱水烘烤生产中。
Amorphophallus Konjac is a herb of the Araceae Amorphophallus, which distributed mainly in some countries in the tropic and semitropical zone of the Asia and parts of the Africa, And it is very abundant in ous country. But a commonly encountered problem in the initial process of the Konjak when peeling off or sliceing up, is the brown stain. So this thesis performed a systemic research about the brown stain on it. Briefly, we took the Amorphophallus mairei (A.mairei) in wanyuan, and the A.white as the study material first, then we compared the changes of the polyphenol oxidases' activity and the total polyphenol in this two kinds of konjacs. Centred with the brown stain and the polyphenol's oxidadation, this paper has also carried out some other eperiments relevant them. The main contents and the results are as follows:
1. We took the spectrophotometre to measure the activity of the polyphenol oxidase and the extent of the brown stain, and the method of Folin to measure the content of the polyphenol, and the results shown that the extent of the decreasing of the white konjac's is lower than the A.mairei, when preservatived in normal temperature after the postharvest. And the quantity of the total polyphenol in white konjak's corm is higher than the A.mairei's. The extent of the white konjac's brown stain is less than that of A.mairei's.
2. When using the ultraviolet scan on the two konjac's brown stain of their substances, the wave peaks of them were at the same place with the dopamine. So the substances of their brown stain maybe a substance of the dopamines.
3. Using the gel electrophoresis of the condense concentration 4.5% and the separate concentration 7.5% of the polyacrylamide, to apart the two kinds of konjacs. Then according the same zone when coloration the gel electrophoresis, we got the conclusion that it's a same kind of enzymes leading to the brown stain in the two konjaks.
4. When we researched the influences of the temperature, the pH values,and the inhibitor of different concentrations on the activity of the polyphenol oxidase, the experents showed that the proper temperarure of the white konjak's polyphenol oxidase is about 35℃, whereas the other's 30 ℃ or so. When incubation 30min above 100℃, the activity of the white konjac is decreased by 95%, whereas the A.mairei decreased by 99.5%. The optimum pH values of the PPO (polyphenol oxidate) is 5~5.5, and below 2.2 or above 8 the activity is loss totally. And the activity of the PPO will loss in the gross when the concentration of the phytic acid is 6‰ above, and the concentration of the L-cysteine is above the 0.04‰~0.07‰, and the concentration of the citric acid is above 9‰ ~10‰, and the concentration of the ascorbic acid is above 0.1‰~0.12‰.
5. After adopting four single factor inhibitors and combined inhibitor in treating with the them, we roasted them at 60℃. Then the results showed that the white konjac can reach the acceptable white of color when the L-cysteine's concentration is 0.01%, and the citric acid is 3%, and the plant acid is 0.5%, make the white konjac diping in them 5min. whereas the A.mairei need the
L-cysteine's concentration reaching at 0.5% and diping in 5min .The concentration of the L-cysteine at abve 0.35%, and the citric acid 1%, then with the inhibitor together dip in 5min, the A.mairei 's color can be acceptable. And the concentration of L-cysteine 0.15%, the citric acid 1%, the phytic acid 2%, etc. Four groups can make the A.mairei reach the acceptable chroma.
6. We found that all the management above are reasonable also when taking the polyglucomannose into grant.
引文
1．周光敏等．魔芋作为传统药物在制作健康食品领域中的应用．资源节约和综合利用．1994．9(3)：37-42
2．冲增 哲等编．魔芋科学(日)．四川大学出版社，1994
3．孙远明等．魔芋葡甘聚糖的结构、食品学性质及保健功能．食品与发酵工业．1999．25(5)：47-51
4．曲宏．魔芋食品的保健功能及市场开拓．辽宁食品与发酵，1999，(1)：28-31
5．吴雪卿，朱卫丰．魔芋药用研究刍议．时珍国医国药，1999，10(8)：631-632
6．茅彩萍．魔芋的研究进展．中国野生植物资源．1998，17(4)：15-19
7．尉芹，马希汉．魔芋开发利用研究综述．西北林学院学报，1998，13(3)：62-67
8．孙恪遵等．魔芋精粉减肥的实验研究．营养学报，1991，13(2)：161
9．李小宁．魔芋甘露低聚糖口服液对雌性ICR小鼠免疫功能的调节作用．江苏预防医学，1998，(4)，3-4
10．张茂玉等．魔芋食品对便秘者肠道功能的影响．营养学报．1990，12(6)：185-190
11．崔熙，蒋晓聪，李松林，周平．白魔芋精粉通便作用的研究．中药材，1996，19(12)：627-629
12．古章良．凌树表．白魔芋精粉对荷瘤小鼠的抑瘤和免疫增强作用．营养学报．1998．20(3)：343-347
13．吴杰，彭恕生．魔芋精粉与几种常用膳食纤维降血脂效果比较及机理探讨．营养学报，1993，15(2)：130-136
14．黄承钰，张茂玉，彭恕生等．魔芋食品对糖尿病患者血糖影响的研究．营养学报，1989，11(4)：360-367
15．彭恕生，张茂玉．张银柱，吴紫华．魔芋精粉对大鼠脑、肝、心血管细胞老化的影响．营养学报，1994，16(3)：280-283
16．古元冬，史建勋，胡桌逸．魔芋多糖的抗衰老作用．中草药，1990，30(2)：127-128
17．张立实，王瑞淑．魔芋精粉对大鼠消化道吸收和慢性铅中毒的影响．现代预防医学．1998．25(1)：79-81
18．邹新禧，谢美然．魔芋葡甘露聚糖研究进展．现代化工，1995，(12)：15-17
19．文泽富．魔芋葡甘聚糖及其在食品工业上的应用．食品工业．1992，(3)：36-37
20．王淼．蜂蜜酒澄清技术的研究．云南农业大学学报，1999，14(1)：63-64
21．李波，谢笔钧．国外魔芋葡甘露聚糖的开发研究现状．农牧产品开发，1999，(8)
22．胡寅华，张万国，闫志武．魔芋开发利用和发展前景．农牧产品开发．1997，(1)：9-11
23．高铭，董瑛．魔芋糊涂料印花应用研究．中国纺织大学学报，1997，23(1)：63-64
24．王贞富．王可．国内外魔芋的开发与利用．食品与机械，1990(2)：4-7
25．楼文高，柏春祥，殷肇君．国内外魔芋的开发和利用．中国畜产与食品，1999，6(1)：23-24
26．刘佩瑛．张盛林．中国魔芋产业的兴起现状问题和对策．山区开发，第9期：3-7
27．马岩松，车芙蓉，张平，周亚凤南果梨多酚氧化酶最适作用酶促褐变底物的分析确定．食品科学，2000，21(1)：11-13
28．[日]五十岚修著．刘继生、奚印慈译．科学出版社．食品化学-食品成分的特性和变化．1994，174-181
29. R. couture, R., Cantwell, M. I., Ke, D., and Saltveit, Jr., M. E. Physiological attributes related to quality attributes and storage life of minimally processed lettuce. Hort Sci., 1993, 28(7): 723-725
30. Asemota, H.N.,Wellington,M.A.,Odutuga A.A.,and Ahmad,M.H.Effect of short-term storage on phenlic content, O-diphenolase and peroxidase activity of cut yam tubers(Dioscorea Sp.).J.Sci.Food Agric.,1992, 60: 309-312
31．黄光荣．切割果蔬保鲜．食品科技，2000．(3)：28-29
32．谭兴杰，周永成．荔枝果皮多酚氧化酶酶促褐变的研究．植物生理学报．1987，13(2)：197-203
33．蒋跃明，陈绵达．林植芳，陈芳．香蕉低温酶促褐变．植物生理学报．1991，17(2)：157-163
34. Bob. M. Moore and William H.Flurkey. Tyrosinase activities and isoeneymes in three strains of mushrooms. J. Food Sci., 1989, 54(5): 1377-1378
35．袁振远，杨李益．儿茶酚氧化酶的酶学特性．食品科学．1985，(1)：4-9
36. Tono T, Fujita S, Ito T. Identification of dopamine in tubers of konjac, J. Jap. Soci Food and nutri, 1974, 27(9): 467-470
37．高馥君．轻度加工果蔬的微生物防治．食品工业月刊．1998，30(9)：13-17
38．程建军．王震新，于静海，腾健敏．苹果梨和鸭梨酶促褐变机理的研究．食品科学，2000，21(2)：71-74
39. Asemota, H. N., et al.. Effect of short-term storage on phenols content, O-diphenolase and peroxidase activity of cut yam tubers. J.Sci.Food Agric., 1992, 60: 309-312
40．王璋．食品酶学．轻工业出版社，1990
41．檀建新，张伟，崔同等．草莓褐变过程中主要氧化酶活性变化．食品科学，1997，18(5)：27-29
42. Myrer Am., etal..Polyophenol oxidases in plants.Phytochemistry,1979, 18: 193
43．天津轻工学院，无锡轻工学院合编．食品生物化学．中国轻工业出版社，1996
44．胡军．莲藕中多酚氧化酶特性及莲藕的护色．食品与发酵工业，1989，(3)：47-51
45．中国科学院上海植物生理研究所植物生理学会编．现代植物生理学实验指南．科学出版社．1999
46. Roberc C.Hider and Konarad Lerch.The inhibition of tyrosinase by pyridinones.J.Biochem.,1989, 257: 289-290
47. K. S. Burton, et al., Biochemical changes associated with mushroom quality in Agaricus spp. Enzyme Microb. Technol., 1993, 15: 736-741
48．林向东．张琪，马丽等．苹果中酶活性与贮藏效果相关性的研究．食品科学，2000，21(3)：61-63
49．吴少雄，刘光东．马铃薯多酚氧化酶反应动力学及抑制剂机理的研究．中国畜产与食品，2000，7(1)：10-12
50．谭兴杰，李月标．荔枝果皮多酚氧化酶的部分纯化及性质．植物生理学报，1984，10(4)：339-345
51．杨明．汪志君．莲藕中多酚氧化酶特性的研究．江苏农学院学报，1996，17(1)：47-51
52．高愿军．王素梅．孔谨，高晗．控制梨果发生酶褐变的研究．食品科学，1997，18(6)：15-17
53．李明启．严君灵．荔枝果皮多酚氧化酶的研究．植物学报，1963，11(4)：329-337
54．王清章．史国荣，魏承银．几种防褐变剂对去皮切片马铃薯贮藏的影响．长江蔬菜．1998，(11)：25-26
55. Katsuhiro Kanda, et al.. Purification and properties of tyrosinase isoenzymes from the gill of lentinus edodes fruiting body. Biochem., 1996, 60(8): 1273-1278
56. Manish Kumar, et al.. Activity, isoenzymes and purify of mushroom tyrosinase in commercial preparations. Phytochemistry, 1991, 30(12): 3899-3902
57. Janis lngebrigtsen, et al.. Tyrosinase activity and isoenzymes in developing mushrooms. J. Food Sci.,1989, 54(1): 128-131
58. Isao Kubo and Ikuyo Kinst-Hori.Tyrosinase inhibitory activity of the olive oil flavor compounds.J.Agric. Food Chem., 1999, 47: 4575-4578
59. Varrda Kanhn. Effeet of kojie acid on the hydroxylation of L-tyrosine and tyromine by mushroom tyrosinase. J. Food Biochem.,1998, 22: 455-474
60. Isao Kubo, et al.. Flavonols from saffron flower: tyrosinase inhibitory activity and inhibition mechanism. J. Agrie. Food Chem., 1999, 47: 4121-4125
61. Jose Neptuno Rodringuez-Lopez, et al.. Oxygen michaelis constants for tyrosinase. J. Biochem., 1993, 293: 859-866
62. Juan Carlos Espin, et al.. Kinetic study of the oxidation of r-L-glutaminyl-4-bhydroxybenzcne catalyzed by mushroom tyrosinase. J. Agrie. Food Chem., 1999, 47: 3495-3502
63. Celia W. G. Van Gelde, et al.. Sequence and structural features of plant and fungal tyrosinases. Phytochemistry, 1997, 47(7): 1309-1323
64．天津轻工业学院．无锡轻工业学院编．轻工业出版社．食品生物化学，1985，360-358
65．胡小松，李积宏等．马铃薯丝加工中的褐变因素及其控制．食品科学，1994，(5)：35-41
66．罗志刚等．抗坏血酸和亚硫酸钠在甘薯破碎中抗褐变的研究．食品工业科技，2002，(5)：52-53
67．林晓岚等．锥栗罐头加工中的褐变因素及其控制．福建农业大学学报，2001，30(2)：240-243
68．石小琼，邓金星．钟清泉，赖继堂．L-半胱氮酸和琥珀酸2，2-二甲基酰肼在蘑菇保鲜上的应用．食用菌学报，2001，(8)：29-33
69．石启龙，张培正．脱水苹果的非硫护色工艺研究．食品工业科技，2001，2(22)：50-51
70. Mcevily, A. J., Iygengar, R. and Gross, A. 1991a.U.S.Patent 5,059, 438
71. Mie Soon lee-kim Eun Sun Hwang and kyung Hyun kim. Inhibition studies on burdock polyphenyl
oxidase(PPO)activity. J. Food Proc. and Procs., 1997, 21: 485-494
72．马鹏．马铃薯离体块茎休眠生理研究．中国农业科学院硕士研究生学位论文．2001．6
73．侯金铎等．以基质络合化法防止果蔬酶促褐变的研究．食品科学，1991，(5)：6-11
74. Hemer, R. C. High CO2 effects on plant organs Ch.3 in Postharvest Physiology of Vegetables, J. Weichmann(Ed.), 1987, P, 239-254, Mercel Dekker, Inc., New York and Basel.
75．赵玉生．植酸对腌芥菜的护色保鲜研究初探．郑州工程学院学报，2001，(2)：95-97
76．刘福岭，戴行钧．食品物理与化学分析方法．1987：433-437
77．王清章，刘怀超．孙颉．莲藕贮藏中褐变度及多酚氧化酶活性的初步研究．中国蔬菜．1997(3)：4-6
78．汪家政，范明编．蛋白质技术手册．科学出版社，2000
79．胡万能编，同工酶技术与应用．湖南科技出版社，1985
80．张勇飞．王军．马铃薯萌芽前后的过氧化物酶同工酶变化初步研究．中国马铃薯学术研讨论文集(1999)．黑龙江科学研究出版社，58-61
81．孙远明，杨幼慧，刘佩瑛．魔芋化学去皮与护色研究．食品科学，1997，18(5)：21-23
82．农业部魔芋粉行业技术标准．西南农业大学魔芋研究中心编
83．刘佩瑛．王玉兰．魔芋贮藏生理研究．中国魔芋学术论文集，第二分册．西南农业大学魔芋研究中心编
84．赵友兴．鲜切莲藕酶促褐变机理与控制的研究．南京农业大学硕士学位论文．2002．12
2．冲增 哲等编．魔芋科学(日)．四川大学出版社，1994
3．孙远明等．魔芋葡甘聚糖的结构、食品学性质及保健功能．食品与发酵工业．1999．25(5)：47-51
4．曲宏．魔芋食品的保健功能及市场开拓．辽宁食品与发酵，1999，(1)：28-31
5．吴雪卿，朱卫丰．魔芋药用研究刍议．时珍国医国药，1999，10(8)：631-632
6．茅彩萍．魔芋的研究进展．中国野生植物资源．1998，17(4)：15-19
7．尉芹，马希汉．魔芋开发利用研究综述．西北林学院学报，1998，13(3)：62-67
8．孙恪遵等．魔芋精粉减肥的实验研究．营养学报，1991，13(2)：161
9．李小宁．魔芋甘露低聚糖口服液对雌性ICR小鼠免疫功能的调节作用．江苏预防医学，1998，(4)，3-4
10．张茂玉等．魔芋食品对便秘者肠道功能的影响．营养学报．1990，12(6)：185-190
11．崔熙，蒋晓聪，李松林，周平．白魔芋精粉通便作用的研究．中药材，1996，19(12)：627-629
12．古章良．凌树表．白魔芋精粉对荷瘤小鼠的抑瘤和免疫增强作用．营养学报．1998．20(3)：343-347
13．吴杰，彭恕生．魔芋精粉与几种常用膳食纤维降血脂效果比较及机理探讨．营养学报，1993，15(2)：130-136
14．黄承钰，张茂玉，彭恕生等．魔芋食品对糖尿病患者血糖影响的研究．营养学报，1989，11(4)：360-367
15．彭恕生，张茂玉．张银柱，吴紫华．魔芋精粉对大鼠脑、肝、心血管细胞老化的影响．营养学报，1994，16(3)：280-283
16．古元冬，史建勋，胡桌逸．魔芋多糖的抗衰老作用．中草药，1990，30(2)：127-128
17．张立实，王瑞淑．魔芋精粉对大鼠消化道吸收和慢性铅中毒的影响．现代预防医学．1998．25(1)：79-81
18．邹新禧，谢美然．魔芋葡甘露聚糖研究进展．现代化工，1995，(12)：15-17
19．文泽富．魔芋葡甘聚糖及其在食品工业上的应用．食品工业．1992，(3)：36-37
20．王淼．蜂蜜酒澄清技术的研究．云南农业大学学报，1999，14(1)：63-64
21．李波，谢笔钧．国外魔芋葡甘露聚糖的开发研究现状．农牧产品开发，1999，(8)
22．胡寅华，张万国，闫志武．魔芋开发利用和发展前景．农牧产品开发．1997，(1)：9-11
23．高铭，董瑛．魔芋糊涂料印花应用研究．中国纺织大学学报，1997，23(1)：63-64
24．王贞富．王可．国内外魔芋的开发与利用．食品与机械，1990(2)：4-7
25．楼文高，柏春祥，殷肇君．国内外魔芋的开发和利用．中国畜产与食品，1999，6(1)：23-24
26．刘佩瑛．张盛林．中国魔芋产业的兴起现状问题和对策．山区开发，第9期：3-7
27．马岩松，车芙蓉，张平，周亚凤南果梨多酚氧化酶最适作用酶促褐变底物的分析确定．食品科学，2000，21(1)：11-13
28．[日]五十岚修著．刘继生、奚印慈译．科学出版社．食品化学-食品成分的特性和变化．1994，174-181
29. R. couture, R., Cantwell, M. I., Ke, D., and Saltveit, Jr., M. E. Physiological attributes related to quality attributes and storage life of minimally processed lettuce. Hort Sci., 1993, 28(7): 723-725
30. Asemota, H.N.,Wellington,M.A.,Odutuga A.A.,and Ahmad,M.H.Effect of short-term storage on phenlic content, O-diphenolase and peroxidase activity of cut yam tubers(Dioscorea Sp.).J.Sci.Food Agric.,1992, 60: 309-312
31．黄光荣．切割果蔬保鲜．食品科技，2000．(3)：28-29
32．谭兴杰，周永成．荔枝果皮多酚氧化酶酶促褐变的研究．植物生理学报．1987，13(2)：197-203
33．蒋跃明，陈绵达．林植芳，陈芳．香蕉低温酶促褐变．植物生理学报．1991，17(2)：157-163
34. Bob. M. Moore and William H.Flurkey. Tyrosinase activities and isoeneymes in three strains of mushrooms. J. Food Sci., 1989, 54(5): 1377-1378
35．袁振远，杨李益．儿茶酚氧化酶的酶学特性．食品科学．1985，(1)：4-9
36. Tono T, Fujita S, Ito T. Identification of dopamine in tubers of konjac, J. Jap. Soci Food and nutri, 1974, 27(9): 467-470
37．高馥君．轻度加工果蔬的微生物防治．食品工业月刊．1998，30(9)：13-17
38．程建军．王震新，于静海，腾健敏．苹果梨和鸭梨酶促褐变机理的研究．食品科学，2000，21(2)：71-74
39. Asemota, H. N., et al.. Effect of short-term storage on phenols content, O-diphenolase and peroxidase activity of cut yam tubers. J.Sci.Food Agric., 1992, 60: 309-312
40．王璋．食品酶学．轻工业出版社，1990
41．檀建新，张伟，崔同等．草莓褐变过程中主要氧化酶活性变化．食品科学，1997，18(5)：27-29
42. Myrer Am., etal..Polyophenol oxidases in plants.Phytochemistry,1979, 18: 193
43．天津轻工学院，无锡轻工学院合编．食品生物化学．中国轻工业出版社，1996
44．胡军．莲藕中多酚氧化酶特性及莲藕的护色．食品与发酵工业，1989，(3)：47-51
45．中国科学院上海植物生理研究所植物生理学会编．现代植物生理学实验指南．科学出版社．1999
46. Roberc C.Hider and Konarad Lerch.The inhibition of tyrosinase by pyridinones.J.Biochem.,1989, 257: 289-290
47. K. S. Burton, et al., Biochemical changes associated with mushroom quality in Agaricus spp. Enzyme Microb. Technol., 1993, 15: 736-741
48．林向东．张琪，马丽等．苹果中酶活性与贮藏效果相关性的研究．食品科学，2000，21(3)：61-63
49．吴少雄，刘光东．马铃薯多酚氧化酶反应动力学及抑制剂机理的研究．中国畜产与食品，2000，7(1)：10-12
50．谭兴杰，李月标．荔枝果皮多酚氧化酶的部分纯化及性质．植物生理学报，1984，10(4)：339-345
51．杨明．汪志君．莲藕中多酚氧化酶特性的研究．江苏农学院学报，1996，17(1)：47-51
52．高愿军．王素梅．孔谨，高晗．控制梨果发生酶褐变的研究．食品科学，1997，18(6)：15-17
53．李明启．严君灵．荔枝果皮多酚氧化酶的研究．植物学报，1963，11(4)：329-337
54．王清章．史国荣，魏承银．几种防褐变剂对去皮切片马铃薯贮藏的影响．长江蔬菜．1998，(11)：25-26
55. Katsuhiro Kanda, et al.. Purification and properties of tyrosinase isoenzymes from the gill of lentinus edodes fruiting body. Biochem., 1996, 60(8): 1273-1278
56. Manish Kumar, et al.. Activity, isoenzymes and purify of mushroom tyrosinase in commercial preparations. Phytochemistry, 1991, 30(12): 3899-3902
57. Janis lngebrigtsen, et al.. Tyrosinase activity and isoenzymes in developing mushrooms. J. Food Sci.,1989, 54(1): 128-131
58. Isao Kubo and Ikuyo Kinst-Hori.Tyrosinase inhibitory activity of the olive oil flavor compounds.J.Agric. Food Chem., 1999, 47: 4575-4578
59. Varrda Kanhn. Effeet of kojie acid on the hydroxylation of L-tyrosine and tyromine by mushroom tyrosinase. J. Food Biochem.,1998, 22: 455-474
60. Isao Kubo, et al.. Flavonols from saffron flower: tyrosinase inhibitory activity and inhibition mechanism. J. Agrie. Food Chem., 1999, 47: 4121-4125
61. Jose Neptuno Rodringuez-Lopez, et al.. Oxygen michaelis constants for tyrosinase. J. Biochem., 1993, 293: 859-866
62. Juan Carlos Espin, et al.. Kinetic study of the oxidation of r-L-glutaminyl-4-bhydroxybenzcne catalyzed by mushroom tyrosinase. J. Agrie. Food Chem., 1999, 47: 3495-3502
63. Celia W. G. Van Gelde, et al.. Sequence and structural features of plant and fungal tyrosinases. Phytochemistry, 1997, 47(7): 1309-1323
64．天津轻工业学院．无锡轻工业学院编．轻工业出版社．食品生物化学，1985，360-358
65．胡小松，李积宏等．马铃薯丝加工中的褐变因素及其控制．食品科学，1994，(5)：35-41
66．罗志刚等．抗坏血酸和亚硫酸钠在甘薯破碎中抗褐变的研究．食品工业科技，2002，(5)：52-53
67．林晓岚等．锥栗罐头加工中的褐变因素及其控制．福建农业大学学报，2001，30(2)：240-243
68．石小琼，邓金星．钟清泉，赖继堂．L-半胱氮酸和琥珀酸2，2-二甲基酰肼在蘑菇保鲜上的应用．食用菌学报，2001，(8)：29-33
69．石启龙，张培正．脱水苹果的非硫护色工艺研究．食品工业科技，2001，2(22)：50-51
70. Mcevily, A. J., Iygengar, R. and Gross, A. 1991a.U.S.Patent 5,059, 438
71. Mie Soon lee-kim Eun Sun Hwang and kyung Hyun kim. Inhibition studies on burdock polyphenyl
oxidase(PPO)activity. J. Food Proc. and Procs., 1997, 21: 485-494
72．马鹏．马铃薯离体块茎休眠生理研究．中国农业科学院硕士研究生学位论文．2001．6
73．侯金铎等．以基质络合化法防止果蔬酶促褐变的研究．食品科学，1991，(5)：6-11
74. Hemer, R. C. High CO2 effects on plant organs Ch.3 in Postharvest Physiology of Vegetables, J. Weichmann(Ed.), 1987, P, 239-254, Mercel Dekker, Inc., New York and Basel.
75．赵玉生．植酸对腌芥菜的护色保鲜研究初探．郑州工程学院学报，2001，(2)：95-97
76．刘福岭，戴行钧．食品物理与化学分析方法．1987：433-437
77．王清章，刘怀超．孙颉．莲藕贮藏中褐变度及多酚氧化酶活性的初步研究．中国蔬菜．1997(3)：4-6
78．汪家政，范明编．蛋白质技术手册．科学出版社，2000
79．胡万能编，同工酶技术与应用．湖南科技出版社，1985
80．张勇飞．王军．马铃薯萌芽前后的过氧化物酶同工酶变化初步研究．中国马铃薯学术研讨论文集(1999)．黑龙江科学研究出版社，58-61
81．孙远明，杨幼慧，刘佩瑛．魔芋化学去皮与护色研究．食品科学，1997，18(5)：21-23
82．农业部魔芋粉行业技术标准．西南农业大学魔芋研究中心编
83．刘佩瑛．王玉兰．魔芋贮藏生理研究．中国魔芋学术论文集，第二分册．西南农业大学魔芋研究中心编
84．赵友兴．鲜切莲藕酶促褐变机理与控制的研究．南京农业大学硕士学位论文．2002．12