岷江百合(Lilium regale Wils.)悬浮细胞系的建立及耐盐筛选
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摘要
我国北方大部分地区水和土壤偏碱性导致了百合切花质量下降,制约了百合生产的发展。因此,培育耐盐碱百合品种就成为解决这一问题的有效方法。岷江百合(Lilium regale Wils.)是百合属中耐盐碱的优良种类。本文选用岷江百合为试材,以鳞片诱导愈伤组织为起始材料,培育出稳定的悬浮细胞系,得到再生植株;以岷江百合生长良好的胚性愈伤组织为试验材料,羟脯氨酸(HYP)和NaCl两种作为筛选剂,采用一步筛选法得到岷江百合耐盐细胞系。主要研究结果如下:
     1.以试管苗鳞片作为外植体,获得诱导愈伤组织的适宜培养条件为:光照条件下,MS+6-BA 1.0~2.0mg/L+NAA 0.1mg/L+3%蔗糖。在黑暗条件下,MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1mg/L+3%蔗糖有利于愈伤组织的继代培养,易形成淡黄色疏松的胚性愈伤组织。光照培养下,愈伤组织的颜色出现绿色、褐色不同程度的变化,不利于愈伤组织的继代培养。
     2.通过对不同的接种量、蔗糖浓度、激素配比的研究得出了悬浮细胞适宜的生长条件:接种量2.0g/40mL,蔗糖浓度以30g~60g/L为宜,激素组合为MS+1.0 mg/L6-BA。根据悬浮细胞生长曲线得出,7天继代一次较适宜。
     3.采用一步筛选法将生长良好的胚性愈伤组织接种到不同NaCl和HYP浓度下进行筛选,得到不同盐浓度下的岷江百合耐盐细胞系。本试验只对在最高盐浓度下(70mmol/LNaCl与0.15mmol/LHYP)得到的耐盐变异体进行分析。
     4.通过测定耐盐变异体的生理生化指标发现,0.15mmol/LHYP耐盐变异体的脯氨酸、可溶性糖的含量显著高于对照,分别是对照的1.88和1.54倍,丙二醛的含量低于对照,并且各项生理指标两者之间都达到极显著性差异。而70mmol/LNaCl耐盐变异体的各项指标与对照之间没有达到显著性差异,表明0.15mmol/LHYP耐盐变异体为真正的耐盐变异体,而70mmol/LNaCl耐盐变异体为盐生理适应性愈伤组织。
     5.在盐胁迫下,耐盐变异体的生长量都高于对照,K~+、Na~+含量也高于对照,并能保持与对照相近的K~+/Na~+比。表明筛选得到的0.15mmol/LHYP耐盐变异体具有耐盐性和稳定性。
On the condition of alkalescence in soils and water in North China,the cut flower quality of lily decreased seriously and the development of lily was restricted.Therefore,breeding of salt tolerant lily variety was a effective way to solve this question.Lilium regale Wils. was the excellent material for salt-toletant selection in Lilium species.In this paper,the bulbscales of L regale were used as explants to induce callus.Suspension cell lines were established and plants regenerated from the cell lines.By posotive selection methods,the callus were selected to obtain the salt-tolerant lines with the selective pressure of NaCl and HYP.The main results described as follows:
     1. The bulbscales of L regale were used as explants to induce callus in diffrent hormones.Finally,the results showed that the eligible medium to callus induction was MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.1mg/L+3%sugar.Light was suitable for growth of callus;It was showed that the optimal medium to callus subculture was MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.1mg/L+3%sugar in the dark.On the condition of dark, callus growed quickly and the color of callus was yellow.On the condition of light,the color of callus changed to green and brown differently.
     2. By researching the inoculum densities,sucrose concentrations and hormones,it showed that the optimal conditions for the growth of L regale cell lines were as follows:2.0g/40mL,30-60g/L sucrose,optimal medium was MS+1.0mg/L 6-BA. According to the growth curve of cell,it was better to subculture in seven-day cycles.
     3. The callus were planted onto the media containing maintained different NaCl and HYP concentrations.By posotive selection methods,the salt-tolerant callus of different salt concentrations were obtained.However,the salt-tolerant callus of highest salt concentations (70mmol/LNaCl and 0.15mmol/LHYP) were only researched.
     4. Through physiological and biochemical analyse,the contents of proline and soluble sugar of the salt-tolerant callus of 0.15mmol/LHYP were 1.88,1.54 times higher than control respectively,the content of MDA of the salt-tolerant callus was lower than control.It was included that the salt-tolerant callus of 0.15mmol/LHYP had significant salt tolerance,but the salt-tolerant callus of 70mmol/LNaCl did not have.So the salt-tolerant callus of 0.15mmol/LHYP was the true salt-tolerant variants,but the salt-tolerant callus of 70mmol/LNaCl was only the cells adaptability to salt.
     5. The salt-tolerant callus of 0.15mmol/LHYP and the control were planted onto the media containing maintained different NaCl concentrations.It showed, in 20 days, that the growth rate of the salt-tolerant callus and the content of K~+、Na~+ were higher than the control and the ratio of K~+/Na~+ was the similar to the control.
引文
1. Arzate-Fernandez A M, Nakazaki T, Okumoto Y. Efficent callus induction and plant regeneration from filaments with anther in lily (Lilium longiflorum Thunb.)[J]. Plant Cell Reports,1997,16:836-840.
    2. Chaleff R S, Parsons M F. Direct selection in vitro for herbicide-resistant mutants of Nicotiana tabacum[J]. Acad. Sci,1975,12:5104-5107.
    3. Croughan T P, Stavarek S J, Rains D W. In vitro development of salt resistant plants[J]. Environmental and Experimental Botany,1981,21(3):317-324.
    4. Croughan T P, Stavarek S J, Rains D W. Selection of a NaCl Tolerant Line of Cultured Alfalfa Cells[J]. Crop Science,1978,18:959-963.
    5. Dix P J,Street H E. Sodium chloride-resistant cultured cell lines from Nicotiana sylvestris and Capsicum annuum[J]. Plant Science Letters,1975,5:231-237.
    6. Enaksha R M, Wickremesinhe, Holcomb E J,et al. A practical method for the production of flowering Easter lilies from callus cultures[J]. Scientia Horticulturae,1994,60:143-152.
    7. Femelaer I, Bordas M, Baliu E,et al. The use of morphogenic suspension cultures for the development of a protoplast regeneration system in Lily[J]. Acta Hort,1997,430:339-345.
    8. Femelaer I, Ennik E, van Tuyl J M, et al. The establishment of suspension and meristem cultures for the development of a protoplast regeneration and fusion system in Lily[J]. Acta Hort,1996,414:161-167.
    9. Gosal S S, Bajaj Y P S. Isolation of sodium chloride resistant cell lines in some grain-legumes[J]. Indian Journal of Experimental Biology,1984,22:209-214.
    10. Hanny T, Karl D.In vitro-selection of hydroxyprolline-resistant cell lines of wheat(Triticum aestivum): accumulation of proline, decrease in osmotic potential,and increase in frost tolerance[J]. Physiologia Plantarum,1991,82:243-248.
    11. Jain R K, Dhawan R S, Sharma D R,et al. Salt-tolerance and proline accumulation:a comparative study in salt-tolerant and wild type cultured cells of eggplant[J]. Plant Cell Reports,1987,6:383-384.
    12. Kathryn K, Janet C, Roger L. The establishment of cell suspension cultures of Gladiolus that regenerate plants[J]. In Vitro Cell Dev.Biol,1990,26:425-430.
    13. Keiiehi O,Yoshito A,Katsuji O. Interspecific hybrids between Lilium Oriental hybrid and L.Asiatic hybrid produced by embryo culture with revised media[J]. Breeding science, 1994,44:59-64.
    14. Kyeung Ⅱ P, Jeong D C, Sun J E. Effect of sucrose and plant growth regulator concentrations on callus proliferation and adventitious bud induction from callus of Lilium Oriental Hybrid ‘Casa Blanca’[J]. J.Kor.Hort.Sci,2003,44(6):986-990.
    15. Kyeung Ⅱ P, Jeong D C,Mi S B, et al. Induction and proliferation of callus in LiliumOriental Hybrids in vitro[J]. Journal of the Korean Society for Horticulture Science,2000,
    41(6):641-646.
    16. Liu M C, Yeh H S. Selection of a NaCl tolerant line through stepwise salinized sugarcane cell cultures[J]. Plant Tissue Culture,1982:477-478.
    17. Masaru N,Toshiaki S, Sakae S, et al. Decrease in the regeneration potential of long-term cell suspension cultures of Lilium formosanum Wallace and its restoration by the auxin transport inhibitor, 2,3,5-triiobenzoic acid[J]. Plant Science,2000,158:129-137.
    18. Mccoy T J. Characterization of alfalfa(Medicago sativa L.)plants regenerated from selected NaCl tolerant cell line[J]. Plant Cell Report,1987,6:417-422.
    19. Mii M, Yuzawa Y, Suetomi H, et al. Fertile plant regeneration from protoplasts of seed-propagated cultivar of Lilium×formolongi by utilizing meristematic nodular cell clumps[J]. Plant Science,1994,100:221-226.
    20. Mori S, Adachi Y, Horimoto S, et al. Callus formation and plant regeneration in various Lilium Species and cultivars[J]. In Vitro Cellular&Developmental Biology-Plant, 2005,41(6):783-788.
    21. Nabors M W, Ibbsse G, Bernstein C S. NaCl-tolerant tobacco plants from cultured cell[J]. Z. Pflanzenphysiol,1980,97:13-17.
    22. Okumoto Y, Nakazaki T. Efficient callus induction and plant regeneration from filaments with anther in lily[J]. Plant Cell Reports,1997,16:836-840.
    23. Pelkonen V P, Anneli K. The effect of light and auxins on the regeneration of lily (Lilium Regale Wil.) cells by somatic embryogenesis and organogenesis[J]. International Journal of Plant Sciences,1999,160(3):483-490.
    24. Ramsay J L, Galitz D S. Basal medium and sucrose concentration influence regeneration of Easter Lily in ovary culture[J]. Hort Science,2003,38(3):404-406.
    25. Rangan T S, Vasil I K. Sodium Chloride tolerant embryogenic cell lines of pennisetum americanum(L.)K.Schum[J]. Annals of Botany,1983,52:59-64.
    26. Ruchira P, Ganapathy P S. Isolation of sodium chloride-tolerant callus line of Cicer arietinum L[J]. Plant Cell Reports,1984,3:45-47.
    27. Stephen F, Chandler,Indar K. Selection and characterization of NaCl tolerant cells from embryofenic cultures of Pennidetium purpureum schum.(Napier grass)[J]. Plant Science Letters,1984,37:157-164.
    28. Sugiura H, Agong S G, Enami A. Comparison between Embryoid and Shoot Primordia Methods of Plantlet Production for ‘Asiatic Hybrid Lily’ and ‘Oriental Hybrid Lily’[J]. African Crop Science Journal,2006,8(2):117-127.
    29. Swaaij A C, Jacobsen E, Kiel J A K W, et al. Selection,characterization and regeneration of hydroyproline-resistant cell lines of Solanum tuberosum: Tolerance to NaCl and freezing stress[J]. Physiol.Plantarum,1986,68:359-366.
    30. Toshinari G, Katsunori K,Tomoyuki T,et al. In vitro propagation utilizing suspensioncultures of meristematic nodular cell clumps and chromosome stability of Lilium×formolongi hort[J]. Scientia Horticulturae,1998,72:193-202.
    31. Tribulato A,Remotti P C, Loeffler H J M, et al. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Lilium longiflorum Thunb[J]. Plant Cell Reports,1997,17(2):113-118.
    32. Voetherg G S, Sharp R E.Growth of the maize primary root at low water potentials[J]. Plant Physiol,1991,96:l1-25.
    33. Yoshito A. Studies on crosses between distantly related species of Lilies V. characteristics of newly obtained hybrids through embryo culture[J]. Hort.Sci,1980,49(2):241-250.
    34. 常立.岷江百合植株再生技术研究[D]:(硕士学位论文).雅安:四川农业大学,2004.
    35. 褚云霞,陈龙清,黄燕文等.百合的花药培养研究[J].园艺学报,2001,28(5):472-474.
    36. 崔红,陈亮,沈明山等 .甘薯胚性悬浮系的建立及其细胞生长特性研究 [J].厦门大学学报(自然科学版),2002,41(5):555-558.
    37. 董 志 渊 , 郑 思 乡 . 百 合 的 组 织 培 养 及 在 其 育 种 中 的 应 用 [J]. 西 部 林 业 科 学 , 2004,33(2):64-68.
    38. 杜 立 群 , 李 银 心 , 李 洪 杰 等 . 在 1/3 海 水 培 养 基 上 筛 选 豆 瓣 菜 耐 盐 变 异 体 [J]. 植 物 学报,1999,41(6):633-639.
    39. 方 文 娟 , 韩 烈 保 , 曾 会 明 等 . 植 物 细 胞 悬 浮 培 养 影 响 因 子 研 究 [J]. 生 物 技 术 通报,2005,5:11-14.
    40. 高 桂 珍 , 周 吉 源 . 喜 树 细 胞 悬 浮 培 养 中 生 理 生 化 指 标 的 测 定 [J]. 武 汉 植 物 学 研究,2003,21(3):259-261.
    41. 高玉红,李云.植物离体培养筛选耐盐突变体的研究[J].核农学报,2004,18(6):448-452.
    42. 郭岩,张耕耘,陈少麟等.抗羟脯氨酸水稻变异系的筛选及其特性的研究[J].实验生物学报,1993,26(2):101-105.
    43. 韩晓光,薛哲勇,支大英等.高羊茅胚性愈伤组织的高效诱导及其耐盐突变体筛选[J].草业学报, 2005,14(6):112-118.
    44. 何钢,文亚峰,付杰等.人心果细胞悬浮培养的初步研究[J].经济林研究,2004,22(4):43-46.
    45. 何 勇 , 田 志 宏 , 郑 用 琏 . 马 蹄 金 悬 浮 细 胞 系 的 建 立 与 优 化 [J]. 华 中 农 业 大 学 学报,2005,24(4):401-405.
    46. 贺道耀,余叔文.水稻高脯氨酸愈伤组织变异体的选择及其耐盐性[J].植物生理学报,1995, 21(1):65-72.
    47. 胡博然,徐文彪,马峰旺.枸杞胚细胞悬浮培养系统建立的研究[J].西北农林科技大学学报(自然科学版),2003,31(1):99-100.
    48. 黄 济 明 , 赵 晓 艺 , 张 国 民 等 . 玫 红 百 合 为 亲 本 育 成 百 合 种 间 杂 种 [J]. 园 艺 学报,1990,17(2):153-156.
    49. 蒋细旺,司怀军.百合的组织培养技术综述[J].湖北农业科学,2004,1:78-82.
    50. 李娟,程智慧,张国裕.马铃薯耐盐突变体的离体筛选[J].西北农林科技大学学报(自然科学版),2004,32(8):43-47.
    51. 李娟.马铃薯(Solanum tuberosum L.)愈伤组织培养和耐盐突变体的离体筛选[D]:(硕士学位论文).杨凌:西北农林科技大学,2003.
    52. 李玉平 ,龚 宁 ,李美玲等 .2,4-D和 KT对大花金挖耳愈伤组织诱导的影响 [J].西北农业学报, 2006,15(4):147-152.
    53. 李增裕.苹果砧木耐盐变异细胞系筛选和鉴定指标的研究 [D]:(硕士学位论文 ).保定:河北农业大学,2003.
    54. 梁军 ,魏刚 ,吕全等 .印楝细胞悬浮培养系的建立及悬浮培养 [J].林业科学研究 ,2003,16 (5):568-574.
    55. 梁小红,韩烈保,齐春晖.结缕草耐盐变异体的筛选[J].四川草原.2005,8:18-20.
    56. 梁小红.三种草坪草耐 NaCI 变异细胞的筛选及再生植株生理生化特性研究[D]: (硕士学位论文).北京:北京林业大学,2005.
    57. 廖飞雄,潘瑞炽.羟脯氨酸对离体培养的菜薹幼苗、茎尖和愈伤组织的生理效应[J].植物生理学通讯,2004,40(1):56-58.
    58. 林定波,颜秋生,沈德绪.柑桔抗羟脯氨酸细胞变异系的选择及其抗寒性研究[J].浙江农业大学学报,1999,25(1):94-98.
    59. 刘 春 朝 , 王 玉 春 , 郑 重 等 . 剪 切 力 对 植 物 细 胞 悬 浮 培 养 的 影 响 [J]. 化 工 治金,1998,19(4):379-384.
    60. 刘坤,刘春,明军,穆鼎,汤庚国.岷江百合愈伤组织继代培养的研究[C].中国观赏园艺研究进展,2007,228-231.
    61. 刘振虎.几种草坪草 NaCl胁迫反应及其耐盐机制的分析研究[D]:(硕士学位论文 ).北京:中国农科院,2001.
    62. 马连菊,高峰,于翠梅等.玉米细胞悬浮系的建立与单细胞培养效果[J].沈阳农业大学学报, 2002,33(6):449-451.
    63. 毛 桂 莲 , 许 兴 . 枸 杞 耐 盐 突 变 体 的 筛 选 及 生 理 生 化 分 析 [J]. 西 北 植 物 学 报 , 2005,25(2):275-280.
    64. 孟新亚.大蒜胚性细胞悬浮系的建立[D]:(硕士学位论文).郑州:河南农业大学,2002.
    65. 穆鼎,刘春,义鸣放.观赏百合[M].北京:中国农业出版社,2005.
    66. 阙国宁,诸葛强.黄竹细胞悬浮培养和原生质体分离[J].林业科学研究,1994,7(1):44-47.
    67. 孙敬三,桂耀林.植物细胞工程实验技术[M].北京:科学出版社.1995.
    68. 孙 君 社 , 方 晓 华 . 植 物 激 素 对 百 合 鳞 片 愈 伤 组 织 生 长 的 影 响 [J]. 中 国 农 业 大 学 学报,2001,6(2):58-61.
    69. 汪 良 驹 , 刘 友 良 , 马 凯 等 . 无 花 果 细 胞 系 耐 盐 性 与 抗 氧 化 酶 活 性 的 变 化 [J]. 园 艺 学报,1999,26(6):351-355.
    70. 王长泉.常夏石竹抗盐突变体的筛选[J].园艺学报,2001,28(5):469-471.
    71. 王海波.组织培养中细胞状态的调控[J].作物杂志,1991,3:3-6.
    72. 王建设.葡萄细胞悬浮系的建立及 BADH 基因转化的研究[D]:(硕士学位论文).泰安:山东农业大学, 2001.
    73. 王 俊 丽 , 陈 丕 铃 , 杨 庆 仙 . 杜 仲 细 胞 的 悬 浮 培 养 [J]. 河 北 大 学 学 报 ( 自 然 科 学版),1997,17(3):78-80.
    74. 王 丽 艳 , 梁 国 鲁 等 . 百 合 的 离 体 培 养 及 再 生 植 株 的 快 速 繁 殖 [J]. 贵 州 农 业 科学,2003,31(6):19-21.
    75. 王仑山,陆卫,孙彤等.枸杞耐盐变异体的筛选及植株再生[J].遗传,1995,17(6):7-11.
    76. 王仑山,王鸣刚,王亚馥.利用组织和细胞培养筛选作物耐盐突变体的研究[J].植物学通报,1996,13(2):7-12.
    77. 王 素 芳 , 王 志 林 , 蒋 琳 兰 等 . 植 物 细 胞 悬 浮 培 养 [J]. 中 国 生 物 制 品 学 杂志,2002,15(6):381-383.
    78. 王 兴 军 ,姚 敦 义 .运 用 多 步 正 选 择 系 统 筛 选 木 模 耐 盐 变 异 体 (简 报 )[J].植 物 生 理 学 通讯,1994,30(1):22-24.
    79. 王友生 ,李阳春 ,梁慧敏等 .紫花苜蓿愈伤组织诱导及植株再生的研究 [J].草原与草坪 , 2006,4:55-57.
    80. 韦小敏.玉米胚性愈伤组织耐盐变异体的筛选以及耐盐性分析[D]:(硕士学位论文).郑州:河南农业大学,2001.
    81. 夏启中 ,张献龙 ,聂以春等 .棉花胚性细胞悬浮系的建立及其影响因素分析 [J].棉花学报,2005,17(1):12-17.
    82. 向太和,钟华鑫,梁海曼.水稻胚性悬浮细胞系建立过程中的生理生化变化[J].作物学报, 1995,21(2):223-229.
    83. 刑 登 辉 , 吴 琴 生 , 刘 大 钧 . 黑 麦 胚 性 悬 浮 细 胞 系 的 建 立 和 植 株 再 生 [J]. 作 物 学报.1995,21(6):759-761.
    84. 徐 云 远 , 王 鸣 刚 , 贾 敬 芬 . 红 豆 草 耐 盐 愈 伤 组 织 的 筛 选 及 植 株 再 生 [J]. 西 北 植 物 学报,2000,20(1):15-21.
    85. 杨宝灵,姜健,封德全等.紫花苜蓿耐盐突变体的筛选[J].大连民族学院学报,2006,3:40-43.
    86. 叶和春.水稻细胞悬浮培养及植株再生的研究[J].植物学报,1984,26(1):52-59.
    87. 尹庆良,刘世强.水稻细胞悬浮系及其单细胞培养的研究[J].沈阳农业大学学报,1994,25 (4):366-372.
    88. 于惠敏,霍丽云,陈保金.葡萄耐羟脯氨酸变异细胞系的筛选及其特性研究[J].植物生理学通讯,1998,34(5):352-355.
    89. 于艳丽 .苹果组织培养变异的人工诱发和选择 [D]:(硕士学位论文 ).泰安 :山东农业大学,2005.
    90. 张 建 华 , 陈 火 英 , 庄 天 明 . 番 茄 耐 盐 体 细 胞 变 异 体 的 离 体 筛 选 [J]. 西 北 植 物 学报,2002,22(2):257-262.
    91. 张洁,葛会波,张学英等.草莓细胞悬浮培养条件优化及植株再生的研究[J].河北农业大学学报,2005,28(1):28-31.
    92. 张 进 仁 , 陈 善 春 , 高 峰 . 柑 橘 细 胞 悬 浮 培 养 及 再 生 植 株 的 研 究 [J]. 热 带 作 物 学报,1993,14(2):67-70.
    93. 张兰 .苹果砧木组培苗耐盐诱变及筛选技术研究[D]:(硕士学位论文).保定 :河北农业大学,2002.
    94. 张治安,张美善,蔚荣海.植物生理学实验指导[M].北京:中国农业科学技术出版社.2004.
    95.张自立,俞新大.植物细胞和体细胞遗传学技术与原理[M].北京:高等教育出版社.1990.
    96.赵军,徐莺,严钫等.红花愈伤组织的诱导与花柱愈伤组织的继代悬浮培养[J].四川大学学报(自然科学版),2001,38(3):421-424.
    97.赵庆芳,曾小英,丁兰等.晶体百合组织培养及快速繁殖的研究[J].甘肃科学学报,2003,15(1):39-42.
    98.赵秀梅.葡萄组培苗耐盐筛选技术研究[D]:(硕士学位论文).杨凌:西北农林科技大学,2004.
    99.赵宇玮.小麦耐盐变异系和耐甘露醇变异系的离体筛选及生理生化特性分析[D]:(硕士学位论文).西安:西北大学,2001.
    100.郑霞.玉米体细胞抗盐突变体的筛选及耐盐性鉴定[D]:(硕士学位论文).郑州:河南农业大学,2003.
    101.周春江,李卫东,葛会波.草莓悬浮细胞系的建立及某些影响因素[J].植物生理学通讯,2002,38(1):22-24.
    102.周俊彦.植物体细胞在组织培养中产生的胚状体二.影响植物胚状体发生和发育的因素[J].植物生理学报,1982,8(1):91-99.
    103.朱宝成,吴爱民,成亚利等.掌叶半夏细胞悬浮培养及单细胞培养再生植株[J].作物学报,1996,22(2):197-200.
    104.朱新贵,郭勇.玫瑰茄悬浮细胞合成花青素的光效应研究[D]:(硕士学位论文).广州:华南理工大学,1998.

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