百合繁殖器官离体培养研究
摘要
本论文主要通过对东方百合、亚洲百合的繁殖器官如鳞球茎、珠芽、花器官进行离体组织培养试验，从而比较不同百合品种间繁殖器官的离体培养差异，并分别在灭菌、诱导分化、继代增殖、结鳞茎和生根移栽等方面进行了研究，试验结果表明：
1、百合不同繁殖器官灭菌效果有差异，珠芽和花器官的灭菌效果好于鳞片；亚洲百合珠芽较适宜的灭菌剂组合为：15％NaClO(15′)+0.1％HgCl_2(1.5′)，花器官较适宜的灭菌剂组合为：15％NaClO(10′)+0.15％HgCl_2(10′)，鳞片较适宜的灭菌剂组合为：0.1％HgCl_2(10′)+0.15％HgCl_2(10′)。
2、不同百合品种鳞片的诱导分化能力不同，亚洲百合的诱导分化率为67.74％，平均生成的小鳞茎数为4.480；玛妮莎百合的诱导分化率为58.82％，平均生成的小鳞茎数为3.487；星球战士百合的诱导分化率为52.78％，平均生成的小鳞茎数为4.167。适宜的诱导分化培养基为：Ms基本培养基附加6-BA0.5 mg·L~(-1)+KT0.5 mg·L~(-1)+NAA0.3 mg·L~(-1)。
3、同一品种不同部位的鳞片诱导能力有差异，分别表现为，亚洲百合：中层＞内层＞外层；玛妮莎百合：外层＞中层＞内层；星球战士百合：外层＞中层＞内层。
4、激素组合KT2.0 mg·L~(-1)+NAA0.5 mg·L~(-1)对亚洲百合珠芽的诱导分化效果好，诱导分化率为33.33％。
5、不同激素种类与浓度配比对百合花器官的诱导分化结果不同，当2，4-D浓度为1.0 mg·~(-1)时，有利于愈伤组织的诱导；6-BA2.0 mg·L~(-1)+KT0.5mg·L~(-1)+NAA0.1 mg·L~(-1)分化不定芽的效果好。
6、不同百合花器官的不同部位愈伤组织分化出芽有明显差异，表现为：亚洲百合：花丝＞花瓣＞花柱＞子房；玛妮莎百合：花丝＞花柱＞子房＞花瓣；星球战士百合：花瓣＞花柱＞花丝＞子房。
7、两激素组合6-BA1.25 mg·L~(-1)+NAA0.20 mg·L~(-1)对亚洲百合芽增殖效果好；6-BA1.0 mg·L~(-1)+NAA0.25 mg·L~(-1)对玛妮莎百合芽增殖效果好；6-BA1.0 mg·L~(-1)+NAA0.30 mg·L~(-1)对星球战士百合芽增殖效果好。
8、细胞分裂素KT在壮苗方面优于同浓度水平的6-BA。
9、不同浓度的三种激素组合对百合芽继代增殖效果不同，以6-BA1.0mg·L~(-1)+KT0.6 mg·L~(-1)+NAA0.2 mg·~(-1)的激素配比对百合的芽继代增殖效果最好。
10、不同营养附加成分对百合芽继代增殖的影响不同，椰子汁浓度在15—20％范围内有利于芽增殖和试管苗的生长，椰子汁对百合继代效果好于马铃薯汁。
11、亚洲百合在90g·L~(-1)的蔗糖浓度下结鳞茎率为100％；玛妮莎百合在45 g·L~(-1)下达到100％；星球战士在60 g·L~(-1)下结鳞茎率为100％。高浓度(100～120 g·L~(-1))蔗糖对百合试管苗结鳞茎不利。
12、浓度范围(10～20 mg·L~(-1))的香豆素对百合结鳞茎有一定的促进作用。
13、单一生长素NAA对百合的生根壮苗效果好于相同浓度水平的IBA、ABT。
14、较低浓度范围(0.5～1.0 mg·L~(-1))的多效唑与NAA1.0 mg·L~(-1)配合使用对百合生根壮苗有较好的促进作用。
15、不同种类的基质按一定比例混和对试管苗的生长有利，较适宜的百合试管苗移栽基质为1／4泥炭+1／4河沙+1／2腐殖土。
16、百合组培移栽苗以1／6MS培养液作叶面肥效果好。
This paper mainly studied in vitro culture of Lily, which compareddifferent varieties of Lily in vitro culture through Oriental Lily, AsiaticLily reproductive organs such as scales bulb, bulblet and floral organ. Fivestages of primary research were processed, which included sterilization,induction and differentiation, subculture multiplication, bulblet formation,rooting and transplanting. The results showed as follows:
1.The effects on different reproductive organs sterilization were differentwith different sterilant combinations: 15％NaClO 15 min+0.1％HgCl_2 15 minwas suitable to sterilited the bulblet of Asiatic Lily; 15％NaClO 10 min+0.15％HgCl_2 10 min was suitable to sterilited the floral organs; 0.1％HgCl_2.10min+0.15％HgCl_2 10 min was suitable to sterilited the squamas.
2. There were different frequencies of buds induction and differentiatiationwith squama of different varieties. The frequency of buds differentiation withAsiatic Lily was 67.74％, the average of induced bulblets was 4.48; that ofManissa was 58.82％and 3.487; that of Starfighter was 52.78％and 4.167. Theappropriate medium for induction and differentiation was MS basic medium added6- BA 0.5mg·L~(-1)+KT0.5mg·L~(-1)+NAA 0.3mg·L~(-1).
3. Different part of a squamas gave different responses to the effect ofinduction on the same varieties. The inducting fequencies of middle scales withAsiatic Lily was the highest, inner scales was the second, and outer scaleswas the lowest. The inducting fequencies of outer scales with Manissa Lily wasthe highest, middle scales was the second, and inner scales was the lowest.But the results of Starfighter Lily showed that the highest was outer scales and the lowest was inner scales.
4. The optimal hormone Combination for bulblets of Asiatic Lily was 2.0mg·L~(-1)KT and 0.5mg·L~1NAA. The induction frequencies of buds was 33.33％.
5. There were different hormone categories and concentration combinationson induction and differentiation of floral organ. When the concentration of2, 4-D was 1.0 mg·L~(-1), it was good for callus induction. When the medium combinedwith 2.0mg·L~(-1)6-BA, 0.5mg·L~(-1)KT and 0.1mg·L~(-1)NAA, it was more profit forbuds induction.
6. There were obvious difference in the bud differentiation of calli thatinduced from different parts of Lily floral organ, in which showed that thebud differentiation rate from filament was the highest, followed by petal, thelowest was from ovary of Asiatic Lily; while in Manissa Lily, the highest buddifferentiation rate was from filament, followed by style, and the lowest wasfrom petal. For starfighter Lily, the highest bud differentiation rate was frompetal, followed by style, and the lowest was from ovary.
7. The optimal combination of two hormone for buds subculture multiplicationof Asiatic Lily was 1.25mg·L~(-1)6-BA+0.20mg·L~(-1)NAA; that of Manissa was 1.0mg·L~(-1)6-BA+0.25mg·L~(-1) NAA; that of Starfighter was 1.0mg·L~(-1) 6-BA+0.30mg·L~(-1)NAA.
8. At the same concentration level, the cytomin KT was better than 6-BA insound plantlet aspect.
9. Different combinations of three hormones gave different responses to theeffect of buds subculture multiplication. The treatment with 6-BA1.0mg·L~(-1)+KT0.6mg·L~1+NAA0.2mg·L~(-1) showed the better effect than the others.
10. There were different effects on subculture multiplication of Lily withadditional different nutritional components. Concentration in the range ofcoconut milk (15-20％) was favorable to buds multiplication and plantlet growth.The effect of coconut milk on subculture multiplication was better than thatof potato juice.
11. Under 90g·L~(-1)sucrose concentration, the rate of bulblet formation withAsiatic Lily reached 100％; that of Manissa Lily and Starfighter Lily were 45 g·L~(-1) and 60g·L~(-1). High concentrations(100-120g·L~(-1))sucrose was unfavourableto bulblet formation of Lily plantlet.
12. Concentration range of cumarin(10-20mg·L~(-1)) could promot bulbletformation.
13. The rooting and sound plantlet effect of NAA was superior to the sameconcentration level of IBA or ABT.
14. Low concentration range of MET(0.5-1.0mg·L~(-1)) combined with(1.0mg·L~(-1))NAA, which could accelerate root induction and sound plantlet.
15. Different types of matrix mixture according to a fixed percentagebenefited Lily plantlet growth. The optimal translation matrix mixture was 1/4peat +1/4 sand +1/2 humus soil.
16. 1/6MS liquid proved the best concentration in leaf-sprinkle fertilizersfor the plantlets translation of Lily.
1、百合不同繁殖器官灭菌效果有差异，珠芽和花器官的灭菌效果好于鳞片；亚洲百合珠芽较适宜的灭菌剂组合为：15％NaClO(15′)+0.1％HgCl_2(1.5′)，花器官较适宜的灭菌剂组合为：15％NaClO(10′)+0.15％HgCl_2(10′)，鳞片较适宜的灭菌剂组合为：0.1％HgCl_2(10′)+0.15％HgCl_2(10′)。
2、不同百合品种鳞片的诱导分化能力不同，亚洲百合的诱导分化率为67.74％，平均生成的小鳞茎数为4.480；玛妮莎百合的诱导分化率为58.82％，平均生成的小鳞茎数为3.487；星球战士百合的诱导分化率为52.78％，平均生成的小鳞茎数为4.167。适宜的诱导分化培养基为：Ms基本培养基附加6-BA0.5 mg·L~(-1)+KT0.5 mg·L~(-1)+NAA0.3 mg·L~(-1)。
3、同一品种不同部位的鳞片诱导能力有差异，分别表现为，亚洲百合：中层＞内层＞外层；玛妮莎百合：外层＞中层＞内层；星球战士百合：外层＞中层＞内层。
4、激素组合KT2.0 mg·L~(-1)+NAA0.5 mg·L~(-1)对亚洲百合珠芽的诱导分化效果好，诱导分化率为33.33％。
5、不同激素种类与浓度配比对百合花器官的诱导分化结果不同，当2，4-D浓度为1.0 mg·~(-1)时，有利于愈伤组织的诱导；6-BA2.0 mg·L~(-1)+KT0.5mg·L~(-1)+NAA0.1 mg·L~(-1)分化不定芽的效果好。
6、不同百合花器官的不同部位愈伤组织分化出芽有明显差异，表现为：亚洲百合：花丝＞花瓣＞花柱＞子房；玛妮莎百合：花丝＞花柱＞子房＞花瓣；星球战士百合：花瓣＞花柱＞花丝＞子房。
7、两激素组合6-BA1.25 mg·L~(-1)+NAA0.20 mg·L~(-1)对亚洲百合芽增殖效果好；6-BA1.0 mg·L~(-1)+NAA0.25 mg·L~(-1)对玛妮莎百合芽增殖效果好；6-BA1.0 mg·L~(-1)+NAA0.30 mg·L~(-1)对星球战士百合芽增殖效果好。
8、细胞分裂素KT在壮苗方面优于同浓度水平的6-BA。
9、不同浓度的三种激素组合对百合芽继代增殖效果不同，以6-BA1.0mg·L~(-1)+KT0.6 mg·L~(-1)+NAA0.2 mg·~(-1)的激素配比对百合的芽继代增殖效果最好。
10、不同营养附加成分对百合芽继代增殖的影响不同，椰子汁浓度在15—20％范围内有利于芽增殖和试管苗的生长，椰子汁对百合继代效果好于马铃薯汁。
11、亚洲百合在90g·L~(-1)的蔗糖浓度下结鳞茎率为100％；玛妮莎百合在45 g·L~(-1)下达到100％；星球战士在60 g·L~(-1)下结鳞茎率为100％。高浓度(100～120 g·L~(-1))蔗糖对百合试管苗结鳞茎不利。
12、浓度范围(10～20 mg·L~(-1))的香豆素对百合结鳞茎有一定的促进作用。
13、单一生长素NAA对百合的生根壮苗效果好于相同浓度水平的IBA、ABT。
14、较低浓度范围(0.5～1.0 mg·L~(-1))的多效唑与NAA1.0 mg·L~(-1)配合使用对百合生根壮苗有较好的促进作用。
15、不同种类的基质按一定比例混和对试管苗的生长有利，较适宜的百合试管苗移栽基质为1／4泥炭+1／4河沙+1／2腐殖土。
16、百合组培移栽苗以1／6MS培养液作叶面肥效果好。
This paper mainly studied in vitro culture of Lily, which compareddifferent varieties of Lily in vitro culture through Oriental Lily, AsiaticLily reproductive organs such as scales bulb, bulblet and floral organ. Fivestages of primary research were processed, which included sterilization,induction and differentiation, subculture multiplication, bulblet formation,rooting and transplanting. The results showed as follows:
1.The effects on different reproductive organs sterilization were differentwith different sterilant combinations: 15％NaClO 15 min+0.1％HgCl_2 15 minwas suitable to sterilited the bulblet of Asiatic Lily; 15％NaClO 10 min+0.15％HgCl_2 10 min was suitable to sterilited the floral organs; 0.1％HgCl_2.10min+0.15％HgCl_2 10 min was suitable to sterilited the squamas.
2. There were different frequencies of buds induction and differentiatiationwith squama of different varieties. The frequency of buds differentiation withAsiatic Lily was 67.74％, the average of induced bulblets was 4.48; that ofManissa was 58.82％and 3.487; that of Starfighter was 52.78％and 4.167. Theappropriate medium for induction and differentiation was MS basic medium added6- BA 0.5mg·L~(-1)+KT0.5mg·L~(-1)+NAA 0.3mg·L~(-1).
3. Different part of a squamas gave different responses to the effect ofinduction on the same varieties. The inducting fequencies of middle scales withAsiatic Lily was the highest, inner scales was the second, and outer scaleswas the lowest. The inducting fequencies of outer scales with Manissa Lily wasthe highest, middle scales was the second, and inner scales was the lowest.But the results of Starfighter Lily showed that the highest was outer scales and the lowest was inner scales.
4. The optimal hormone Combination for bulblets of Asiatic Lily was 2.0mg·L~(-1)KT and 0.5mg·L~1NAA. The induction frequencies of buds was 33.33％.
5. There were different hormone categories and concentration combinationson induction and differentiation of floral organ. When the concentration of2, 4-D was 1.0 mg·L~(-1), it was good for callus induction. When the medium combinedwith 2.0mg·L~(-1)6-BA, 0.5mg·L~(-1)KT and 0.1mg·L~(-1)NAA, it was more profit forbuds induction.
6. There were obvious difference in the bud differentiation of calli thatinduced from different parts of Lily floral organ, in which showed that thebud differentiation rate from filament was the highest, followed by petal, thelowest was from ovary of Asiatic Lily; while in Manissa Lily, the highest buddifferentiation rate was from filament, followed by style, and the lowest wasfrom petal. For starfighter Lily, the highest bud differentiation rate was frompetal, followed by style, and the lowest was from ovary.
7. The optimal combination of two hormone for buds subculture multiplicationof Asiatic Lily was 1.25mg·L~(-1)6-BA+0.20mg·L~(-1)NAA; that of Manissa was 1.0mg·L~(-1)6-BA+0.25mg·L~(-1) NAA; that of Starfighter was 1.0mg·L~(-1) 6-BA+0.30mg·L~(-1)NAA.
8. At the same concentration level, the cytomin KT was better than 6-BA insound plantlet aspect.
9. Different combinations of three hormones gave different responses to theeffect of buds subculture multiplication. The treatment with 6-BA1.0mg·L~(-1)+KT0.6mg·L~1+NAA0.2mg·L~(-1) showed the better effect than the others.
10. There were different effects on subculture multiplication of Lily withadditional different nutritional components. Concentration in the range ofcoconut milk (15-20％) was favorable to buds multiplication and plantlet growth.The effect of coconut milk on subculture multiplication was better than thatof potato juice.
11. Under 90g·L~(-1)sucrose concentration, the rate of bulblet formation withAsiatic Lily reached 100％; that of Manissa Lily and Starfighter Lily were 45 g·L~(-1) and 60g·L~(-1). High concentrations(100-120g·L~(-1))sucrose was unfavourableto bulblet formation of Lily plantlet.
12. Concentration range of cumarin(10-20mg·L~(-1)) could promot bulbletformation.
13. The rooting and sound plantlet effect of NAA was superior to the sameconcentration level of IBA or ABT.
14. Low concentration range of MET(0.5-1.0mg·L~(-1)) combined with(1.0mg·L~(-1))NAA, which could accelerate root induction and sound plantlet.
15. Different types of matrix mixture according to a fixed percentagebenefited Lily plantlet growth. The optimal translation matrix mixture was 1/4peat +1/4 sand +1/2 humus soil.
16. 1/6MS liquid proved the best concentration in leaf-sprinkle fertilizersfor the plantlets translation of Lily.
引文
[1] 赵祥云，王树栋．陈新露，等．百合[M]．北京：中国农业出版社，1999．
[2] 杨云光，邓成忠．食用百合品种介绍[J]，中国果菜．2002，5：13．
[3] 邢伟民，陈杏禹．亦花亦菜亦药百合[J]．营养与保健．2001，1：37．
[4] 丁成伟，周权军．百合系列产品加工工艺[J]．食品科学．1994，6：72～73．
[5] 杨天宝，王晔．百合汁饮料的研制[J]．食品科技．2000，1：48．
[6] 鞠昭年，薛新华，范志华．新型饮料—百合汽水的生产工艺[J]，中国野生植物资源．1995，2：44～48．
[7] 世忠．美食良药话百合[J]．食物指南．2000，6：7．
[8] 张泽峰．防癌抗癌吃百合[J]．药膳食疗．2003，6：36．
[9] 胥京宜．百合的开发与利用[J]．湖北农业科学．1999，4：44．
[10] 陈心启，许介眉等．中国植物志，(第十四卷)[M]．北京：科学出版社．1980，116～166．
[11] 洪波．百合花卉的研究综述[J]．东北林业大学学报．2000，28(2)：68～70．
[12] 龙雅宜，张进政，张兰年等．百合一球根花卉[M]．北京：金盾出版社．1999：1～6．
[13] 赵庚义．草本花卉育苗新技术[M]．北京：中国农业大学出版社．1997．
[14] 刘建常，魏周兴．兰州百合鳞茎增重规律的探讨[J]．中国蔬菜．1994，(5)：27～30．
[15] 买自珍，黄玉库．食用百合需肥规律的研究[J]．宁夏农林科技．1993，(1)：19～22．
[16] 郎立新，姜凤英，陈振举等．麝香百合的栽培[J]．辽宁农业科学．1998，(5)：49～51．
[17] BLANKENSHIPSM, BAILEYDA, MILLERJM. Effects of continous low level sofethy leneon grow than of low erring of Easter Lily[J]. Scientia Horticulture, 1993,53(4):311～317.
[18] 崔永春．麝香百合的栽培与花期控制[J]．花木盆景．1997，(6)：14～15．
[19] 张云，原雅玲，刘青林．百合品种改良与生物技术研究进展[J]．北京林业大学学报．2001，23(6)：56～59．
[20] 张西丽，周厚高．百合远缘杂交育种研究现状[J]．广西农业生物科学，1999，18(2)．157-160．
[21] Yoshito Asano. Studies on crosses between distantly related species of Lilies Ⅴ. characteristics of newly obtained hybrids through embryo culture[J]. Japan. Soc. Hort. Sci. 1980,49(2): 241～250.
[22] Keiiehi Okazaki, Yoshito Asano, Katsuji Oosawa. Interspeacific hybrids between L. Oriental hybrid and L. Asiatic hybrid produced by embryo culture with revised media [J]. Breeding science. 1994, 44: 59～64.
[23] A.-M. Arzate-Femandez,T. Nakezaki,T. Tansaka. Production of diploid and triploid interspecific hybrids between L. concolor and L. longoflorum by invitro ovary slice culture[J ]. Plant Breeding. 1998,117:479～84.
[24] 黄济明，赵晓艺，张国民，等．枚红百合为亲本育成百合种间杂种[J]．园艺学报．1990，17(2)：153～159．
[25] 杨利平，马宪红，丁冰，等．百合花卉种间杂交种的培育[J]．东北林业大学学报．1997，25(1)：29～32．
[26] 杨利平，张方，丁冰．百合种间远缘杂交种的育成[J]．河北林果研究．1998，13(3)：212～216．
[27] Van Tuyl I M, van Tuyl J M, et al, Lily breading research[J], the Netherlands. ActaHort, 1996, 414: 35～45.
[28] Tanaka T, Nishihara M, Seki M, et al, Successful expression in pollen of various plant species of in vitro synthesized mRNA introduced by partiCle bombardment [J].Plant Mol Biol, 1955, 28(2):337～341
[29] Watad A A, Yun D J, Matsumoto T. Microorojectile bombardmentdiated transformation of L. longiform [J]. Plant Cell Rep. 1997,17(4):262～267
[30] Langeveld S A, Gerris M M, Derks F L M, et al. Transformation of lily by Agrobacterium[J]. Euphytica. 1995, 85:1～3,97～100.
[31] 谷祝平，郑国铝．从百合花药诱导花粉植株的研究[J]．植物学报．1982，24(1)：28～31．
[32] 谷祝平，郑国锠．百合未授粉子房的培养及其胚胎学观察[J]．植物学报．1983，25(1)：24～27．
[33] 楮云霞，陈龙清，黄燕文，等．百合的花药培养研究[J]．园艺学报．2001，28(5)：472～474．
[34] 楮云霞，张龙春，杨红绢，等．百合花药愈伤组织诱导中的基因型差异[J]．上海农业学报．2002，18(3)：17～20．
[35] Dong-Sheng Han, Yoshiji Niimi, Masaru Nakamo. Production of doubled haploid plants through colchicine treatment of antherderived haploid calii in the asiatic hybrid lily 'ConnecticutKing' [J]. J. Japan. Soc. Hort. Sci ,1999,68(5): 979～983.
[36] 陆鉴眉．亚洲切花百合引种试初报[J]．福建热作科技．1994，19(1)：31～34．
[37] 王月霞．兰州百合引种初报[J]．江苏农业科学．1995，2：52～53．
[38] 吴家耀，傅萍，崔明昆．昆明地区荷兰百合栽培中一些技术问题的研究[J]．云南教育学院学报．1998，14(2)：61～64，93．
[39] 梁育勤，刘志忠，叶志勇．厦门地区百合新品种引种栽培[J]．亚热带植物通讯．2000，22(3)： 37～38，46．
[40] 赵丽辉，王艳秋，李祥等．荷兰百合引种的初步研究[J]．吉林农业大学学报．2000，19(3)：39～43．
[41] 沈才标，廖才敏，宋龄芳等．鲜切花百合抑制试验[J]．上海农业科技．2002，3：95～97．
[42] 陈为民，宋为民．卷丹和青岛百合的组织培养及植株分化[J]．植物生理学通讯．1982，(2)：35-42
[43] 黄济明．百合的组织培养利试管内诱发多倍体试验[J]．园艺学报，1983，10(2)：125—128．
[44] 杨成德，种康，敬兰花．百合鳞片不同部位小鳞茎分化与激素调节研究[J]．兰州大学学报(自然科学版)，1998，24(3)：95～99．
[45] 王季林，金国良．百合鳞片不同部位繁殖系数的观察[J]．江苏农业科学，1987，(1)：30．
[46] 汪有良．南京百合快速繁殖[J]．江苏林业科技，1995，(1)：35～43．
[47] 杨增海．植物生长调节剂对百合组织培养繁殖的效应[J]．西北师范大学学报，1987，(3)：72～78
[48] 丁兰，刘国安．新铁炮百合组织培养和快繁研究[J]．西北师范大学学报(自然科学版)，2001 37(1)：80～82．
[49] 阮少宁，杨华，梁一池，等．香水百合组织培养的试验研究[J]．福建林学学报，2001，21(2)：142．
[50] Lee J S, Sue J K, Han E J. In vitro bulblet formation from various explant sources and sizes of bulb scale segment in L. elegans hybrid [J]. J Korean Soc Hort Sci, 1994, 35 (5):507～513.
[51] 王家福，陈振光．百合快速繁殖条件优化[J]．福建农业大学学报，1999，28(2)：152～156．
[52] 赵兴兵，袁正仿，张苏锋，等兰州百合的离体快速繁殖研究[J]．信阳师范学院学报(自然科学版)，2001，14(3)：319～321．
[53] 王刚，杜捷，李桂英，等．兰州百合和野百合组织培养及快速繁殖研究[J]．西北师范大学学报．2002，38(1)：69～71．
[54] 马惠，郭扶兴，周俊彦，等．百合叶片愈伤组织的诱导和植株再生[J]．植物生理学讯．1992，28(4)：284～287．
[55] 卢其能．龙牙百合的组织培养和快速繁殖研究[J]．江西农业学报，2002，14(4)：43～46．
[56] 张延龙，徐炎，王洁纯，等．东方百合叶片组织培养研究[J]．西北农林科技大学学报(自然科学版)，2004，32(1)：47～50．
[57] 赵银萍，张九东．用百合叶片及其鳞茎叶片离体诱导不定芽[J]．西安文理学院学报，2005，8(1)：21～23．
[58] 李耿光，张兰英．麝香百合茎段组织培养快速繁殖[J]．云南植物研究．1983，5(3)：327～331．
[59] 陈小兰，胡琼华，王红霞．金百合的离体快速繁殖[J]．植物生理学通讯．2000，36(4)：334．
[60] 赵祥云，程廉，邢尤美，等．百合珠芽组培及脱毒研究[J]．园艺学报．1993，20(3)：284～288．
[61] 王红霞，胡琼华，陈小兰．通江百合的组织培养[J]．植物生理学通讯．2000，36(2)：132．
[62] 李睿．麝香百合的组织培养与快速繁殖[J]．甘肃林业科技．2003，28(2)：13，14，30．
[63] 冷肖月，王青华．外植体和培养因子对百合不定芽诱导的影响[J]．河北林业科技，2030，1：1～2．
[64] 陈善娜，高建莉，郑志英．百合子房的组织培养[J]．云南大学学报(自然科学版)，1997，19(4)：374～375．
[65] 许宝辉．百合子房组织培养研究[J]．西南科技大学学报，2003，18(3)：65～67．
[66] 蔡宣梅，郑伟文，黄建华等．百合花丝组织培养试验[J]．福建农业科技，2001，6：13～14．
[67] 高敏．香水百合的组培快繁[J]．广西农业科学，2002，3：120～121．
[68] 杨薇红，张延龙，童斌等．亚洲百合花器官的组培快繁技术研究[J]．中国农学通报．2004，20(5)：193～195．
[69] 柯昉，陈华，黄宇翔等．东方百合花器离体培养和快速繁殖研究[J]．仲恺农业技术学院学报，2005，18(1)：14～17．
[70] Nhut D T. Shoot induction and plant regenernation from receptaCle tissues ofL. longiflorum [J]. Sci Hort, 2001, 87: 131～138.
[71] 王爱勤，周歧伟，何龙飞，等．百合试管结球茎的研究[J]．广西农业大学学报，1998，17(1)：71～75．
[72] 张文种．不同激素配比对麝香百合鳞茎芽诱导的影响[J]．亚热带植物科学，2002，31(1)：21～24．
[73] Hab B H,Yae B W,Goo D H,etal.Effects of growth regulators and light on the formation and bulbscales in L. oriental hybrid 'Casa Blanca'[J]. J Korean Soc.Hort Sci Hort, 1999,40(4):463～466.
[74] 丁世萍、严菊强，季道藩．糖类在植物组织培养中的效应[J]．植物学通报，1998，15(6)：42～46．
[75] 狄翠霞，安黎哲，张满效，等．西伯利亚百合器官离体培养及结鳞茎的研究[J]．西北植物学报，2005，25(10)：1931～1936．
[76] 曹晓燕，王喆之，赵银萍．毛刺槐花药培养及再生植株的获得[J]．西北植物学报，2003，23(3)：456～459．
[77] 刘芳，兰支利，邓芳，等．香豆素及其衍生物研究进展[J]．精细化工中间体，2006，(36)4：7～11．
[78] 鄢铮，郭德章．马铃薯试管苗组织培养及微型薯诱导技术的研究[J]．中国马铃薯，2004，18(5)：270～271
[79] 石瑛．秦昕．王凤义等．香豆素对马铃薯试管微型薯诱导的影响[J]．马铃薯杂志，2000，14(1)：1～3．
[80] 姚丽娟、林绍生、徐晓薇等．蝴蝶兰防褐化技术探讨[J]．广西热带农业．2004，3：12～13．
[81] 廖俊杰，许继勇，李进进等．铁皮石斛试管种苗产业化生产的技术因素分析[J]．中药材．2006，29(6)：533～535
[82] 王晓佳，植物组织培养学[M]．重庆：西南农业大学出版社，1992：15～21．
[83] 谭文澄．观赏植物组织培养技术[M]．北京：中国林业出版社，1991；53，54；136，137．
[84] 马莺，顾瑞霞编著．马铃薯深加工技术[M]中国轻工业出版社2004：5～21．
[85] 郝玉华．组培苗驯化移栽基质研究[J]．江苏农业科学．2005，5：79～89，99．
[86] 方少忠，蔡宣梅，林真，等．试管苗移栽过渡的几个技术要领[J]．福建农业科技．2003，1：44～45．
[87] 李爱华，杨柳，陈慧玲，等．东方百合组培快繁及试管苗健化栽培技术研究[J]．湖北林业科技．2006，3：5～9．
[2] 杨云光，邓成忠．食用百合品种介绍[J]，中国果菜．2002，5：13．
[3] 邢伟民，陈杏禹．亦花亦菜亦药百合[J]．营养与保健．2001，1：37．
[4] 丁成伟，周权军．百合系列产品加工工艺[J]．食品科学．1994，6：72～73．
[5] 杨天宝，王晔．百合汁饮料的研制[J]．食品科技．2000，1：48．
[6] 鞠昭年，薛新华，范志华．新型饮料—百合汽水的生产工艺[J]，中国野生植物资源．1995，2：44～48．
[7] 世忠．美食良药话百合[J]．食物指南．2000，6：7．
[8] 张泽峰．防癌抗癌吃百合[J]．药膳食疗．2003，6：36．
[9] 胥京宜．百合的开发与利用[J]．湖北农业科学．1999，4：44．
[10] 陈心启，许介眉等．中国植物志，(第十四卷)[M]．北京：科学出版社．1980，116～166．
[11] 洪波．百合花卉的研究综述[J]．东北林业大学学报．2000，28(2)：68～70．
[12] 龙雅宜，张进政，张兰年等．百合一球根花卉[M]．北京：金盾出版社．1999：1～6．
[13] 赵庚义．草本花卉育苗新技术[M]．北京：中国农业大学出版社．1997．
[14] 刘建常，魏周兴．兰州百合鳞茎增重规律的探讨[J]．中国蔬菜．1994，(5)：27～30．
[15] 买自珍，黄玉库．食用百合需肥规律的研究[J]．宁夏农林科技．1993，(1)：19～22．
[16] 郎立新，姜凤英，陈振举等．麝香百合的栽培[J]．辽宁农业科学．1998，(5)：49～51．
[17] BLANKENSHIPSM, BAILEYDA, MILLERJM. Effects of continous low level sofethy leneon grow than of low erring of Easter Lily[J]. Scientia Horticulture, 1993,53(4):311～317.
[18] 崔永春．麝香百合的栽培与花期控制[J]．花木盆景．1997，(6)：14～15．
[19] 张云，原雅玲，刘青林．百合品种改良与生物技术研究进展[J]．北京林业大学学报．2001，23(6)：56～59．
[20] 张西丽，周厚高．百合远缘杂交育种研究现状[J]．广西农业生物科学，1999，18(2)．157-160．
[21] Yoshito Asano. Studies on crosses between distantly related species of Lilies Ⅴ. characteristics of newly obtained hybrids through embryo culture[J]. Japan. Soc. Hort. Sci. 1980,49(2): 241～250.
[22] Keiiehi Okazaki, Yoshito Asano, Katsuji Oosawa. Interspeacific hybrids between L. Oriental hybrid and L. Asiatic hybrid produced by embryo culture with revised media [J]. Breeding science. 1994, 44: 59～64.
[23] A.-M. Arzate-Femandez,T. Nakezaki,T. Tansaka. Production of diploid and triploid interspecific hybrids between L. concolor and L. longoflorum by invitro ovary slice culture[J ]. Plant Breeding. 1998,117:479～84.
[24] 黄济明，赵晓艺，张国民，等．枚红百合为亲本育成百合种间杂种[J]．园艺学报．1990，17(2)：153～159．
[25] 杨利平，马宪红，丁冰，等．百合花卉种间杂交种的培育[J]．东北林业大学学报．1997，25(1)：29～32．
[26] 杨利平，张方，丁冰．百合种间远缘杂交种的育成[J]．河北林果研究．1998，13(3)：212～216．
[27] Van Tuyl I M, van Tuyl J M, et al, Lily breading research[J], the Netherlands. ActaHort, 1996, 414: 35～45.
[28] Tanaka T, Nishihara M, Seki M, et al, Successful expression in pollen of various plant species of in vitro synthesized mRNA introduced by partiCle bombardment [J].Plant Mol Biol, 1955, 28(2):337～341
[29] Watad A A, Yun D J, Matsumoto T. Microorojectile bombardmentdiated transformation of L. longiform [J]. Plant Cell Rep. 1997,17(4):262～267
[30] Langeveld S A, Gerris M M, Derks F L M, et al. Transformation of lily by Agrobacterium[J]. Euphytica. 1995, 85:1～3,97～100.
[31] 谷祝平，郑国铝．从百合花药诱导花粉植株的研究[J]．植物学报．1982，24(1)：28～31．
[32] 谷祝平，郑国锠．百合未授粉子房的培养及其胚胎学观察[J]．植物学报．1983，25(1)：24～27．
[33] 楮云霞，陈龙清，黄燕文，等．百合的花药培养研究[J]．园艺学报．2001，28(5)：472～474．
[34] 楮云霞，张龙春，杨红绢，等．百合花药愈伤组织诱导中的基因型差异[J]．上海农业学报．2002，18(3)：17～20．
[35] Dong-Sheng Han, Yoshiji Niimi, Masaru Nakamo. Production of doubled haploid plants through colchicine treatment of antherderived haploid calii in the asiatic hybrid lily 'ConnecticutKing' [J]. J. Japan. Soc. Hort. Sci ,1999,68(5): 979～983.
[36] 陆鉴眉．亚洲切花百合引种试初报[J]．福建热作科技．1994，19(1)：31～34．
[37] 王月霞．兰州百合引种初报[J]．江苏农业科学．1995，2：52～53．
[38] 吴家耀，傅萍，崔明昆．昆明地区荷兰百合栽培中一些技术问题的研究[J]．云南教育学院学报．1998，14(2)：61～64，93．
[39] 梁育勤，刘志忠，叶志勇．厦门地区百合新品种引种栽培[J]．亚热带植物通讯．2000，22(3)： 37～38，46．
[40] 赵丽辉，王艳秋，李祥等．荷兰百合引种的初步研究[J]．吉林农业大学学报．2000，19(3)：39～43．
[41] 沈才标，廖才敏，宋龄芳等．鲜切花百合抑制试验[J]．上海农业科技．2002，3：95～97．
[42] 陈为民，宋为民．卷丹和青岛百合的组织培养及植株分化[J]．植物生理学通讯．1982，(2)：35-42
[43] 黄济明．百合的组织培养利试管内诱发多倍体试验[J]．园艺学报，1983，10(2)：125—128．
[44] 杨成德，种康，敬兰花．百合鳞片不同部位小鳞茎分化与激素调节研究[J]．兰州大学学报(自然科学版)，1998，24(3)：95～99．
[45] 王季林，金国良．百合鳞片不同部位繁殖系数的观察[J]．江苏农业科学，1987，(1)：30．
[46] 汪有良．南京百合快速繁殖[J]．江苏林业科技，1995，(1)：35～43．
[47] 杨增海．植物生长调节剂对百合组织培养繁殖的效应[J]．西北师范大学学报，1987，(3)：72～78
[48] 丁兰，刘国安．新铁炮百合组织培养和快繁研究[J]．西北师范大学学报(自然科学版)，2001 37(1)：80～82．
[49] 阮少宁，杨华，梁一池，等．香水百合组织培养的试验研究[J]．福建林学学报，2001，21(2)：142．
[50] Lee J S, Sue J K, Han E J. In vitro bulblet formation from various explant sources and sizes of bulb scale segment in L. elegans hybrid [J]. J Korean Soc Hort Sci, 1994, 35 (5):507～513.
[51] 王家福，陈振光．百合快速繁殖条件优化[J]．福建农业大学学报，1999，28(2)：152～156．
[52] 赵兴兵，袁正仿，张苏锋，等兰州百合的离体快速繁殖研究[J]．信阳师范学院学报(自然科学版)，2001，14(3)：319～321．
[53] 王刚，杜捷，李桂英，等．兰州百合和野百合组织培养及快速繁殖研究[J]．西北师范大学学报．2002，38(1)：69～71．
[54] 马惠，郭扶兴，周俊彦，等．百合叶片愈伤组织的诱导和植株再生[J]．植物生理学讯．1992，28(4)：284～287．
[55] 卢其能．龙牙百合的组织培养和快速繁殖研究[J]．江西农业学报，2002，14(4)：43～46．
[56] 张延龙，徐炎，王洁纯，等．东方百合叶片组织培养研究[J]．西北农林科技大学学报(自然科学版)，2004，32(1)：47～50．
[57] 赵银萍，张九东．用百合叶片及其鳞茎叶片离体诱导不定芽[J]．西安文理学院学报，2005，8(1)：21～23．
[58] 李耿光，张兰英．麝香百合茎段组织培养快速繁殖[J]．云南植物研究．1983，5(3)：327～331．
[59] 陈小兰，胡琼华，王红霞．金百合的离体快速繁殖[J]．植物生理学通讯．2000，36(4)：334．
[60] 赵祥云，程廉，邢尤美，等．百合珠芽组培及脱毒研究[J]．园艺学报．1993，20(3)：284～288．
[61] 王红霞，胡琼华，陈小兰．通江百合的组织培养[J]．植物生理学通讯．2000，36(2)：132．
[62] 李睿．麝香百合的组织培养与快速繁殖[J]．甘肃林业科技．2003，28(2)：13，14，30．
[63] 冷肖月，王青华．外植体和培养因子对百合不定芽诱导的影响[J]．河北林业科技，2030，1：1～2．
[64] 陈善娜，高建莉，郑志英．百合子房的组织培养[J]．云南大学学报(自然科学版)，1997，19(4)：374～375．
[65] 许宝辉．百合子房组织培养研究[J]．西南科技大学学报，2003，18(3)：65～67．
[66] 蔡宣梅，郑伟文，黄建华等．百合花丝组织培养试验[J]．福建农业科技，2001，6：13～14．
[67] 高敏．香水百合的组培快繁[J]．广西农业科学，2002，3：120～121．
[68] 杨薇红，张延龙，童斌等．亚洲百合花器官的组培快繁技术研究[J]．中国农学通报．2004，20(5)：193～195．
[69] 柯昉，陈华，黄宇翔等．东方百合花器离体培养和快速繁殖研究[J]．仲恺农业技术学院学报，2005，18(1)：14～17．
[70] Nhut D T. Shoot induction and plant regenernation from receptaCle tissues ofL. longiflorum [J]. Sci Hort, 2001, 87: 131～138.
[71] 王爱勤，周歧伟，何龙飞，等．百合试管结球茎的研究[J]．广西农业大学学报，1998，17(1)：71～75．
[72] 张文种．不同激素配比对麝香百合鳞茎芽诱导的影响[J]．亚热带植物科学，2002，31(1)：21～24．
[73] Hab B H,Yae B W,Goo D H,etal.Effects of growth regulators and light on the formation and bulbscales in L. oriental hybrid 'Casa Blanca'[J]. J Korean Soc.Hort Sci Hort, 1999,40(4):463～466.
[74] 丁世萍、严菊强，季道藩．糖类在植物组织培养中的效应[J]．植物学通报，1998，15(6)：42～46．
[75] 狄翠霞，安黎哲，张满效，等．西伯利亚百合器官离体培养及结鳞茎的研究[J]．西北植物学报，2005，25(10)：1931～1936．
[76] 曹晓燕，王喆之，赵银萍．毛刺槐花药培养及再生植株的获得[J]．西北植物学报，2003，23(3)：456～459．
[77] 刘芳，兰支利，邓芳，等．香豆素及其衍生物研究进展[J]．精细化工中间体，2006，(36)4：7～11．
[78] 鄢铮，郭德章．马铃薯试管苗组织培养及微型薯诱导技术的研究[J]．中国马铃薯，2004，18(5)：270～271
[79] 石瑛．秦昕．王凤义等．香豆素对马铃薯试管微型薯诱导的影响[J]．马铃薯杂志，2000，14(1)：1～3．
[80] 姚丽娟、林绍生、徐晓薇等．蝴蝶兰防褐化技术探讨[J]．广西热带农业．2004，3：12～13．
[81] 廖俊杰，许继勇，李进进等．铁皮石斛试管种苗产业化生产的技术因素分析[J]．中药材．2006，29(6)：533～535
[82] 王晓佳，植物组织培养学[M]．重庆：西南农业大学出版社，1992：15～21．
[83] 谭文澄．观赏植物组织培养技术[M]．北京：中国林业出版社，1991；53，54；136，137．
[84] 马莺，顾瑞霞编著．马铃薯深加工技术[M]中国轻工业出版社2004：5～21．
[85] 郝玉华．组培苗驯化移栽基质研究[J]．江苏农业科学．2005，5：79～89，99．
[86] 方少忠，蔡宣梅，林真，等．试管苗移栽过渡的几个技术要领[J]．福建农业科技．2003，1：44～45．
[87] 李爱华，杨柳，陈慧玲，等．东方百合组培快繁及试管苗健化栽培技术研究[J]．湖北林业科技．2006，3：5～9．