优化安祖花规模化离体培养技术的研究
|
摘要
安祖花是我国近些年引进的一种名贵花卉植物，其花型奇特、花期持久、色彩丰富，深受人们青睐。但以传统的分株方法繁殖安祖花不仅繁殖速度慢、繁殖率极低，而且还受到季节的限制，这些因素极大地限制了安祖花的发展。为了解决这些问题，前人尝试了采用植物离体培养技术来快速繁殖安祖花，遗憾的是目前国内已报道的安祖花组培技术还未能达到工厂化培养的要求，特别是炼苗和移栽技术未能过关，另外，组培苗的病害也较为严重。本研究通过对离体培养中基本培养基、激素、糖类、pH值、光照、附加物、外植体等因素的探索，优化了安祖花快速繁殖体系，提高了愈伤诱导率和不定芽分化率；对安祖花进行移栽前药剂浸泡和炼苗处理，提高了移栽成活率，探讨了栽培过程中基质、光照等因素的影响，提高了种苗的生长速度和质量；对安祖花栽培中出现的细菌性枯萎病的病原菌进行了初步鉴定，运用链霉素抑制了病害的发生。其研究结果如下：
1 安祖花大规模离体培养快速繁殖技术的优化
在安祖花的愈伤组织诱导过程中发现，将BA与2.4-D配合使用比单独使用BA或2.4-D效果要好，诱导率分别提高8％和30％左右。适当降低基本培养基中N元素的浓度可以提高愈伤诱导率，当NH_4NO_3与KNO_3降到250mg／L时，诱导率达到100％，比前人的研究提高15％左右。使用不同糖类，诱导率不同，使用30g／L蔗糖或葡萄糖诱导率均可达到100％，比使用麦芽糖高13％；而在愈伤质量上，用葡萄糖诱导的愈伤组织较大，质量较好。以无菌苗叶片、叶柄为外植体，不同品种诱导率均可达97％以上；而盆栽苗则以全展叶的叶柄和成熟叶的叶片为外植体最好。愈伤组织诱导培养基以改良MS+BA0.2(0.5，1.0)+2.4-D0.1+30g／L葡萄糖较好。
在愈伤组织分化不定芽时，使用较高浓度的BA与NAA，分化率可达到91.7％，而通过使用葡萄糖作为碳源，可使分化率提高到96.1％。分化培养基以改良MS+BA2.5+NAA0.5+30g／L葡萄糖较好，分化率高，分化芽较多。
以腋芽增殖途径繁殖试管苗，培养基以改良MS+B ALO王NAA 0.1较好，增殖倍
数达6.6，芽较长、基部愈伤少:
在安祖花试管苗继代增殖过程中，基本培养基对继代产生影响，在试管苗鲜重
的增长率上，改良MS与MS之间具有极显著差异。椰乳对生长具有促进作用，与
不含椰乳的培养基之间差异显著。强光有利于试管苗的生长，光照强度为5500L况
与2500Lx对试管苗鲜重增加率具有极显著差异。较适合的继代培养基为改良MS
+BA(KT)2.。+NAAO.05+葡萄糖3。叭+椰汁100叭。在此继代培养基上，试管
苗还能长出3一5条粗壮的根，可以不经生根直接进行移栽，简化了培养程序.
2提高安祖花试管苗移栽成活率及生长速度的研究
在试管苗移栽前的处理中，多菌灵溶液浸泡处理比KNln04溶液处理效果要好，
其中，多菌灵以0.2%处理20min较好，成活率达91 .1%，比KMno4溶液处理的要
高12%。
揭膜炼苗对试管苗适应外界环境具有好处，揭膜5天成活率达到86%，揭膜7
天以上，成活率达98%。移栽时带3条或3条以上的根对移栽苗生长时的株高、叶
片数、根数均具有促进作用。
从株高、叶片数、根数方面综合考虑，移栽基质以椰子壳:泥炭土:珍珠岩为
2:0.5:0.5为好。在株高、叶片数、叶面积、根数上，普通日光灯和植物生长灯之间
没有显著差异。
护
3新发现的安祖花细菌性枯萎病致病菌的初步鉴定与防治
从安祖花枯萎病病叶上分离和纯化，得到一株细菌，通过回接安祖花，发现此
细菌为安祖花细菌性枯萎病的致病菌。此细菌为革兰氏阴性菌，通过Biolog
Microstatinn细菌自动鉴定系统将此菌株鉴定为恶臭假单胞菌生物变种A
(Pseudomonas put才da biovarA)。此菌对安祖花的危害未见有报道，因此，此菌为一
种新发现的安祖花细菌性枯萎病的致病菌。
链霉素对此细菌的抑制作用比氯霉素要好，80mglL的链霉素即可完全抑制此细
菌。通过用农用链霉素(1000万单位，149)配制成的0.15%的溶液进行试管苗移栽
前的浸泡处理，最终成活率可以达到94.6%;对移栽苗进行灌根和叶面喷施，对病
害的抑制具有较好的效果。
Anthurium andraeanum, a kind of famous and precious flower introduced to China in recent years, has become the favorite of most people for its peculiar appearance, long flurescense and rich colors. However, the development ofAnthurium andraeanum sector in China was still far from booming due to the backward traditional method of propagation, which was limited to special seasons and of low propagation rates. Tissue culture, applied to rapid propagation of large scale in flower industry, was considered a possible way for Anthurium andraeanum. Unfortunately, many former researchers had tried hard but failed in it, especially in plantlets hardening, transplanting and disease controlling. After systematic researches on related factors such as explants, basic media, hormones, carbon resources, pH, light and additives, the traditional techniques of Large-scaled tissue culture of Anthurium andraeanum in promoting calli induction and buds differentiation were optimized successfully. Survival rate of transplanting was
improved through chemical soaking and adaptive training before transplanting, and growth speed was accelerated through discussing the influences of substance, illumination, etc. At last, the pathogenic bacterium of blight was identified initially and was inhibited by streptomycin. The results as flowing:
1. Improvement on tissue culture techniques of Anthurium andraeanum
For calli inducing, a combination of BA-6 with 2.4-D was more effective than single of them, enhancing inducing rates by about 8% and 30% respectively. The rate of calli inducing also rose up to 100% hi the improved medium with reduced N to 250mg/l in the form of NH4NO3 and KNO3, 15% more than that of previous researches. Different forms of hydrocarbon resources also led to different calli inducing rates and calli qualities. Calli inducing rate could reach 100% in 30g/l sucrose or glucose, 13% higher than in maltose, and the quality of induced calli hi glucose was much better than hi others. Taking leaves and petioles of sterile plantlets as explants, the inducement rates of different varieties were more than 97%. Taking materials from pot plantlets, the petioles of frondesces and blondes of ripe leaves were suitable to induce calli. Modified MS+ BA0.2(0.5orl.O) +2.4-D0.1 +glucose30g/l was proved to be the proper medium for calli induction.
Comparatively higher concentration of BA and low concentration of NAA had positive effects on buds differentiation, and it could be up to 96.1% by glucose as carbon resource. Modified MS+BA2.5+NAA0.5+glucose30g/l was the proper medium for buds differentiation, the quality of buds was better, differentiation rate was higher and quantity was more.
Axillary buds, another kind of ideal explant, multiplied by 5.6 times in modified
MS+BA1.0+NAA0.1.
Basic medium had effects on subculture. Rates of increase on fresh weights of test tube plantlets on modified MS and MS were different extremely remarkably. The culture media containing coconut milk promoted the growth far more effectively than non-coconut milk ones. Strong light was also a stimulus for the growth of test tube plantlets and in the light of 2500Lx to 5500Lx, the increase rates of fresh weight was much higher than those in weaker light. The modified MS+BA(KT)+NAA0.05 +glucose30g/l +CM100g/l was proved to be proper medium for subculture, in which the test tube plantlets were much stronger and 3-5 roots could be induced from it. This kind of plantlets could be transplanted directly.
2. Studies on factors to transplanting survival rate and growth
The Carbendazin-sulfar was superior to KMnO4 in dipping treatment of test tube plantlets against infection before transplantation. 20 minutes such treatment m 0.2% of Carbendazin-sulfar made the survival rate up to 91.1%, 12% higher than that of KMnO4.
Exposed to the outside environment for 5 days by uncovering plastic mantle test tube plantlets could survive by 86% and more than 7 days exposure led to 98% survival. The test tube plantlets with 3 or more roots often grew better. According to increment of
1 安祖花大规模离体培养快速繁殖技术的优化
在安祖花的愈伤组织诱导过程中发现，将BA与2.4-D配合使用比单独使用BA或2.4-D效果要好，诱导率分别提高8％和30％左右。适当降低基本培养基中N元素的浓度可以提高愈伤诱导率，当NH_4NO_3与KNO_3降到250mg／L时，诱导率达到100％，比前人的研究提高15％左右。使用不同糖类，诱导率不同，使用30g／L蔗糖或葡萄糖诱导率均可达到100％，比使用麦芽糖高13％；而在愈伤质量上，用葡萄糖诱导的愈伤组织较大，质量较好。以无菌苗叶片、叶柄为外植体，不同品种诱导率均可达97％以上；而盆栽苗则以全展叶的叶柄和成熟叶的叶片为外植体最好。愈伤组织诱导培养基以改良MS+BA0.2(0.5，1.0)+2.4-D0.1+30g／L葡萄糖较好。
在愈伤组织分化不定芽时，使用较高浓度的BA与NAA，分化率可达到91.7％，而通过使用葡萄糖作为碳源，可使分化率提高到96.1％。分化培养基以改良MS+BA2.5+NAA0.5+30g／L葡萄糖较好，分化率高，分化芽较多。
以腋芽增殖途径繁殖试管苗，培养基以改良MS+B ALO王NAA 0.1较好，增殖倍
数达6.6，芽较长、基部愈伤少:
在安祖花试管苗继代增殖过程中，基本培养基对继代产生影响，在试管苗鲜重
的增长率上，改良MS与MS之间具有极显著差异。椰乳对生长具有促进作用，与
不含椰乳的培养基之间差异显著。强光有利于试管苗的生长，光照强度为5500L况
与2500Lx对试管苗鲜重增加率具有极显著差异。较适合的继代培养基为改良MS
+BA(KT)2.。+NAAO.05+葡萄糖3。叭+椰汁100叭。在此继代培养基上，试管
苗还能长出3一5条粗壮的根，可以不经生根直接进行移栽，简化了培养程序.
2提高安祖花试管苗移栽成活率及生长速度的研究
在试管苗移栽前的处理中，多菌灵溶液浸泡处理比KNln04溶液处理效果要好，
其中，多菌灵以0.2%处理20min较好，成活率达91 .1%，比KMno4溶液处理的要
高12%。
揭膜炼苗对试管苗适应外界环境具有好处，揭膜5天成活率达到86%，揭膜7
天以上，成活率达98%。移栽时带3条或3条以上的根对移栽苗生长时的株高、叶
片数、根数均具有促进作用。
从株高、叶片数、根数方面综合考虑，移栽基质以椰子壳:泥炭土:珍珠岩为
2:0.5:0.5为好。在株高、叶片数、叶面积、根数上，普通日光灯和植物生长灯之间
没有显著差异。
护
3新发现的安祖花细菌性枯萎病致病菌的初步鉴定与防治
从安祖花枯萎病病叶上分离和纯化，得到一株细菌，通过回接安祖花，发现此
细菌为安祖花细菌性枯萎病的致病菌。此细菌为革兰氏阴性菌，通过Biolog
Microstatinn细菌自动鉴定系统将此菌株鉴定为恶臭假单胞菌生物变种A
(Pseudomonas put才da biovarA)。此菌对安祖花的危害未见有报道，因此，此菌为一
种新发现的安祖花细菌性枯萎病的致病菌。
链霉素对此细菌的抑制作用比氯霉素要好，80mglL的链霉素即可完全抑制此细
菌。通过用农用链霉素(1000万单位，149)配制成的0.15%的溶液进行试管苗移栽
前的浸泡处理，最终成活率可以达到94.6%;对移栽苗进行灌根和叶面喷施，对病
害的抑制具有较好的效果。
Anthurium andraeanum, a kind of famous and precious flower introduced to China in recent years, has become the favorite of most people for its peculiar appearance, long flurescense and rich colors. However, the development ofAnthurium andraeanum sector in China was still far from booming due to the backward traditional method of propagation, which was limited to special seasons and of low propagation rates. Tissue culture, applied to rapid propagation of large scale in flower industry, was considered a possible way for Anthurium andraeanum. Unfortunately, many former researchers had tried hard but failed in it, especially in plantlets hardening, transplanting and disease controlling. After systematic researches on related factors such as explants, basic media, hormones, carbon resources, pH, light and additives, the traditional techniques of Large-scaled tissue culture of Anthurium andraeanum in promoting calli induction and buds differentiation were optimized successfully. Survival rate of transplanting was
improved through chemical soaking and adaptive training before transplanting, and growth speed was accelerated through discussing the influences of substance, illumination, etc. At last, the pathogenic bacterium of blight was identified initially and was inhibited by streptomycin. The results as flowing:
1. Improvement on tissue culture techniques of Anthurium andraeanum
For calli inducing, a combination of BA-6 with 2.4-D was more effective than single of them, enhancing inducing rates by about 8% and 30% respectively. The rate of calli inducing also rose up to 100% hi the improved medium with reduced N to 250mg/l in the form of NH4NO3 and KNO3, 15% more than that of previous researches. Different forms of hydrocarbon resources also led to different calli inducing rates and calli qualities. Calli inducing rate could reach 100% in 30g/l sucrose or glucose, 13% higher than in maltose, and the quality of induced calli hi glucose was much better than hi others. Taking leaves and petioles of sterile plantlets as explants, the inducement rates of different varieties were more than 97%. Taking materials from pot plantlets, the petioles of frondesces and blondes of ripe leaves were suitable to induce calli. Modified MS+ BA0.2(0.5orl.O) +2.4-D0.1 +glucose30g/l was proved to be the proper medium for calli induction.
Comparatively higher concentration of BA and low concentration of NAA had positive effects on buds differentiation, and it could be up to 96.1% by glucose as carbon resource. Modified MS+BA2.5+NAA0.5+glucose30g/l was the proper medium for buds differentiation, the quality of buds was better, differentiation rate was higher and quantity was more.
Axillary buds, another kind of ideal explant, multiplied by 5.6 times in modified
MS+BA1.0+NAA0.1.
Basic medium had effects on subculture. Rates of increase on fresh weights of test tube plantlets on modified MS and MS were different extremely remarkably. The culture media containing coconut milk promoted the growth far more effectively than non-coconut milk ones. Strong light was also a stimulus for the growth of test tube plantlets and in the light of 2500Lx to 5500Lx, the increase rates of fresh weight was much higher than those in weaker light. The modified MS+BA(KT)+NAA0.05 +glucose30g/l +CM100g/l was proved to be proper medium for subculture, in which the test tube plantlets were much stronger and 3-5 roots could be induced from it. This kind of plantlets could be transplanted directly.
2. Studies on factors to transplanting survival rate and growth
The Carbendazin-sulfar was superior to KMnO4 in dipping treatment of test tube plantlets against infection before transplantation. 20 minutes such treatment m 0.2% of Carbendazin-sulfar made the survival rate up to 91.1%, 12% higher than that of KMnO4.
Exposed to the outside environment for 5 days by uncovering plastic mantle test tube plantlets could survive by 86% and more than 7 days exposure led to 98% survival. The test tube plantlets with 3 or more roots often grew better. According to increment of
引文
1．蔡明，李树贵，2001．火鹤试管苗移栽技术．农业科技通讯，(5)：14-15
2．蔡维藩，2002．红掌组织培养与快速繁殖．亚热带植物科学，31(3)：66-68
3．曹孜义，刘国民，1999．实用植物组织培养技术教程(修订本)．甘肃科学技术出版社：15，53
4．岑益群，蒋如敏，邓志龙等，1993．安祖花离体增殖的形态发生与理化因子效应．园艺学报，20(2)：187-192
5．陈继敏，2003．水晶花烛的组织培养与快速繁殖．植物生理学通讯，39(2)：150
6．陈晓斌，张炳欣，楼兵干等，2000．BIOLOG系统鉴定黄瓜根围促生菌的初步研究．微生物学通报，27(6)：403-407
7．陈勇，王宏毅，2002．火鹤花穿孔线虫的病原鉴定．植物检疫，16(2)：78-80
8．单芹丽，赵辉，奎丽梅等，2003．红掌的栽培与管理技术．北方园艺，(2)：38-39
9．单芹丽，赵辉，奎丽梅等，2003．红掌的栽培与管理技术．北方园艺，(2)：38-39
10．丁爱萍，张艳春，2003．红掌组织培养研究．中国花卉园艺，(5)：24-26
11．杜启兰，钟士传，2003．盆栽火鹤微体快速繁殖技术研究．中国农学通报，19(4)：106-107
12．冯瑞华，樊蕙，李力等，2000．Biolog细菌自动鉴定系统应用初探．微生物学杂志，20(2)：36-38
13．高崇省，魏亚东，王学令，1996．BIOLOG细菌自动鉴定系统操作体会．中国进出境动植检，(2)：26-27
14．郭春雷，蒋桂芝，祝伟等，2003．热带植物花卉红掌叶腐病病原菌的分离与初步鉴定．云南大学学报(自然科学版)，25(增刊)：32-34
15．韩劲，龚学坤，候继和等，1999．施肥与火鹤叶片营养状况之间的关系．北京农学院学报，14(1)：35-38
16．韩劲，龚学坤，刘悦秋等，1997．不同栽培基质及pH对火鹤幼苗生长的影响．北京农学院学报，12(3)：26-30
17．郝立新，王贤，周涤，2000．花卉植物洋桔梗和火鹤的组培快繁技术．北京农业科学，18(1)：22-23
18．浩仁塔本，余伟莅，1995．安祖花的组织培养和快速繁殖．植物生理学通讯，31(6)：433
19．何燚，莫泽莲，杨开太等，2000．观叶花烛的培育技术．广西林业科学，29(3)：151-152，157
20．胡方平，方敦煌，John Y等，1998．中国猕猴桃细菌性花腐病菌的鉴定．植物病理学报，28(2)：175-180
21．黄小光，丘银清，林雄，2001．观叶花烛的组织培养与快速繁殖．华南师范大学
学报(自然科学版)，(4)：101-102
22．姬广海，魏亚东，蒋桂芝等，2004．红掌细菌性疫病的病原菌初步鉴定．植物病理学报，34(2)：107-111
23．蒋桂芝，郭春雷，2003．西双版纳红掌细菌性疫病病原菌初步研究．热带农业科技，26(3)：10-12
24．蒋桂芝，赵丽芳，2003．西双版纳红掌栽培常见病害初报．热带农业科技，26(1)：14-15
25．蒋泽平，仲磊，李玉巧等，2000．BA与IAA及CH和YE对红掌试管苗增殖和生长的调控．林业科技开发，14(1)：20-22
26．孔宝华，吴红芝，蔡红，2002．红掌花叶病研究初报．植物保护，28(4)：26
27．兰芹英，仇玉萍，张远辉等，2003．不同红掌品种的叶片、叶柄和茎段愈伤组织的诱导及植株再生．西北植物学报，23(6)：1006-1009
28．李宏宇，赵伟东，2001．安祖花萎凋病的识别与防治．花卉，(3)：8
29．李际红，张友鹏，耿翠芳，2003．安祖花试管苗移栽成活率初探．山东林业科技，(2)：11-12
30．李静，1997．几种名贵观赏植物的快速繁殖．河北农业大学学报，20(1)：30-36
31．李孟超，2000．火鹤组培苗无糖生根培养试验．北京林业科学，18(5)：30-32
32．李招文，1990．火鹤花属叶培养育苗研究．亚热带植物通讯，(2)：53-56
33．李志芳，叶秦，赵贵林等，1997．花烛的组织培养与快速繁殖．植物生理学通讯，33(3)：197
34．林德钦，张文珠，李梅，2001．不同栽培基质对红掌组培苗生长的影响．福建农业科技，(4)：16
35．刘素青，1998．花烛病虫害．云南热作科技，21(1)：33-36
36．刘素青，赵丽芳，1999．红掌茎基腐病病原鉴定．云南农业大学学报，14(2)：128-131
37．龙雅宜，2001．几种主要切花的生产技术．西南园艺，29(1)：50-53
38．莫磊兴，李小泉，林贵美等，2003．火鹤花离体培养育苗技术研究．西南农业学报，16(1)：126-128
39．莫源敦，2003．红掌无土栽培新技术．中国花卉园艺，(5)：29
40．倪德祥，邓志龙，岑益群等，1994．紫参和安祖花不定芽人工种子的研究．复旦学报(自然科学版)，33(5)：540-546
41．欧文军，李洪立，尹俊梅，2002．红掌切花栽培中常见病虫害及防治．云南农业科技，(4)：34-37
42．潘学峰，潘梅，洪世军，2000．红掌叶片愈伤组织的诱导与植株再生．海南大学学报自然科学版，18(2)：144-149
43．彭士勇，张志涛，赵亮，2001．无土栽培安祖花的实验研究．辽宁农业职业技术学院学报，3(3)：28-30
44．P．P庇隆著[美](沈瑞祥，段道怀，周仲铭译)，1987．花木病虫害．北京：中国建筑工业出版社
45．宋波，2003．红掌奏响发展主旋律．中国花卉报，01．16
46．宋建华，童骁，陈明锴等，2002．一株高产PLC的CW-W-90-3茵的鉴定．微生物学杂志，22(2)：10-12
47．孙映波，马曼庄，段昆生等，1997．广东主要盆花无土栽培技术研究．广东农业科学，(5)：28-30
48．王进茂，郑均宝，高秀丽，2000．花烛组织培养的研究．河北林果研究，15(1)：69-74
49．王志武，张秀清，王春英，1996．大叶花烛的组培快繁与移栽管理．莱阳农学院学报，13(2)：115-118
50．肖三元，梁国平，2000．红掌组织培养及快速繁殖．云南热作科技，23(2)：12-13
51．谢关林，2000．水稻病原细菌鉴定方法的比较研究．浙江大学学报(农业与生命科学版)，26(4)：353-358
52．谢关林，金扬秀，徐传雨等，2003．我国水稻纹枯病拮抗细菌种类研究．中国生物防治，19(4)：166-170
53．谢为龙，1998．防止火鹤花细菌性叶枯病传入我国．中国进出境动植检，(4)：37-38
54．谢志成，张绍升，2003．火鹤花短尾盾线虫和细尾丝尾线虫鉴定．福建农林大学学报(自然科学版)，32(2)：185-188
55．徐公天，陆庆轩，1999．花卉病虫害防治图册．沈阳：辽宁科学技术出版社
56．徐俊林，2000．红掌的栽培与管理．花木盆景，(6)：6
57．徐明慧，林绍光，丁梦然，1993．花卉病虫害防治．北京：金盾出版社
58．许秀慧，1996．火鹤花细菌性叶枯病的认知与防治．台湾花卉园艺，(103)：26-31；(104)：29-32
59．许秀慧，林俊义，1998．台湾红掌细菌性叶枯病及其病菌对药剂之感受性．植物报护学会会刊，40(4)：409-417
60．杨光孝，李元鑫，岑益群等，1995．安祖花不定芽人工种子直播成株．复旦学报(自然科学版)，34(4)：438-444
61．杨奎妹，张和琴，邹萌等，1998．彩色马蹄莲、大叶花烛新品种引进筛选组织培养试管苗繁殖及栽培技术的研究．园林科技通讯，(6)：1-16
62．杨涛，陈德海，吴荔萍，1998．安祖花组织培养及其细胞和叶绿体发育过程的电镜观察．亚热带植物通讯，27(1)：1-7
63．曾宋君，2000．花烛的繁殖栽培．园林，(1)：21
64．张桂和，徐碧玉，彭存智等，2001．安祖花茎段培养与离体繁殖．上海农业学报，17(3)：13-16
65．张红梅，樊志和，何晓棣等，1999．河北农业科学，3(2)：5-7
66．张惠梅，文衍堂，1998．火鹤花根腐病的病原鉴定．热带作物研究，(3)：29-32
67．张荣意，谭志琼，林兴祖，2001．红掌细菌性叶枯病的症状和病原菌鉴定．热带作物学报，22(2)：48-51
68．张荣意，谭志琼，刘爱荣等，2003．黄单胞菌引致红掌疫病的症状和病原菌鉴定．热带作物学报，24(2)：81-85
69．张绍升，谢志成，2003．火鹤花衰退病诊断与检疫．植物检疫，17(5)：264-268
70．赵国祥，钱云，2002．红掌引种及适应性栽培．云南农业科技，(1)：46-47
71．赵娟，沈强，2001．红掌组培苗的炼苗要点．中国花卉园艺，(17)：30
72．赵兰勇，杜鹏，刘建华等，1999．火鹤花微体快繁试验报告．山东林业科技，(6)：1-4
73．赵秀梅，刘芬，1999．火鹤与白鹤芋组培快繁技术研究．甘肃农业科技，(6)：43-44
74．赵友福，魏亚东，高崇省等，1997．利用Biolog鉴定系统快速鉴定菜豆萎蔫病菌的研究．植物病理学报，27(2)：139-144
75．郑平，顾渝青，刘荣维，1995．三种由Erwinia spp．引起的新的花卉细菌病害．广西农业大学学报，14(4)：295-298
76．郑晓慧，戚佩坤，姜子得，2001a．广州地区天南星科观赏植物上的几种新真菌病害——Ⅰ．华南农业大学学报，22(1)：51-53
77．郑晓慧，戚佩坤，姜子得，2001b．广州地区天南星科观赏植物上的几种新真菌病害——Ⅰ．华南农业大学学报，22(2)：39-41
78．郑卓辉，柯宣东，1999．红掌无性繁殖系的组织培养技术．广东农业科学，(4)：27-28
79. Ann P J, 1992. Phytophthora diseases of ornamental plants in Araecae in Taiwan. Plant pathology Bulletin, (2):79-89
80. Aysan Y, Sahin F, 2003, First report of bacterial blight of Anthurium caused by Xanthomonas axonopodis pv. dieffenbachiae in Turkry. Journal of Plant Pathology, 7:1-2
81. Baum L, Schickedanz F, 1982. Pot anthurinms, control of root rot. Horticultral Abstract, 52(12):784
82. Behr L, 1978. Some notes on the occurrence of pythium splendens Braum Anthurium Scherzerianum hort nonschott. Bulletin, 14(3):199-203
83. Fukui R, Fukui H, Alvarez A M, 1999. Suppression of Bacterial blight by a bacterial community isolated from the guttation fluids of Anthuriums. Applied and Environmental Microbiology, 65(3): 1020-1028
84. Fukui R, Fukui H, McElhaney R, et al, 1996. Relationship between symptom development and actual sites of infection in leaves of Anthurium inoculated with a bioluminescent strain of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae. Applied and Enviromental Microbiology, 62(3): 1021-1028
85. Goto M, 1997. Fundamentals of Bacterial Plant Pathology. USA: San Diego
Academic Press, 256-260
86. Gray H, 1996. ANTHURIUM. Ball Red Book 16th Edition, Ball V., Editor, USA: Ball Publishing:353-356
87. Guo L Y, Ko W H, 1995. Survey of root rot of Anthurium. Horticultural Abstracts, 65(6): 663
88. Hara, A H, Hara T Y, 1994. Pests and diseases. Insects and mites. In: Higaki.T, Lichty J S, Moniz D, et al. Anthurium culture in Hawai'i. Univ Hawaii Res Ext Ser, 152: 11-13
89. Jones J B, Chase A R, Harris G K, 1993. Evaluation of the Biolog GN Microplate System for identification of some plant-pathogenic bacteria. Plant Dis., 77:553-558
90. Kuehnle A R, Chen F C, Sugii N, 1992. Somatic Embrogenesis and, plantlet regeneration in Anthurium andraeanura hybrids. Plant Cell Report, (11):438-442
91. Kuhne H, Leupold R, 1986. Myrothecium likes high humidity. Horticuitural Abstracts, 56(2):127
92. Kunisaki J T, 1980. In vitro propagation of Anthurium andraeanura Lind. Hortscience, 15(4):505-509
93. Natural M P, 1991. Anthurium blight in the Philippines. Horticultural Abstract, 61(7):699
94. Nishijima W T, Fujiyama D K, 1986. Bacterial blight of anthurium. Horticultural Abstracts, 56(7):580
95. Norman D J, Alvarez A M, 1989. A rapid method for the presumptive identification of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae and other Xanthomonads. Plant Disease, 73:654-658
96. Norman D J, Alvarez A M, 1994. Latent infection of in vitro Anthurium caused by Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae. Plant cell,Tissue and Organ culture, 39(1):55-61
97. Norman D J, Yuen J M F, 1999. First report of Ralstonia(Pseudornonas) solanacearum infecting pot Anthurium production in Florida. Plant Disease, 83(3):300.
98. Orlikouwski L, 1976/1977. Observations on fungi occurring on anthurium scherzerianum prace instytuty sadownistwa wskiermeivicack. Bulletin, (2): 193-196
99. Pierik RLM, 1975. Callus multiplication of Anthurium andraeanum Lind. In liquid media. Neth. J. Agr. Sci., (23):299-302
100. Prior P, Rott P, 1989. Bacterial leaf spot of Anthurium caused by a Psedomonas sp. in the French West Indies. Journal of Phytopathology, (124): 1-4,215-224
101. Sathyanarayana N, Reddy O R, Latha S, et al, 1998. Interception of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae on Anthurium plants from Netherlands. Plant Dis.,
82:262
102. Shehata S A, Nishimoto M, Hamiltonm, 1991. The impact of Anthurium blight of the profitability of the industry. Horticultral Abstract, 61(7):698
103. Smalla K, Wachtendorf U, Heuer H, et al, 1998. Analysis of BIOLOG GN substrate utilization patterns by micro-bial communities. Appl. Environ. Microbiol, 64:1220-1225
104. Su C C, Leu L S, 1996. Bacterial wilt of Anthurium caused by Pseudomas solanacearum. Review of Plant Pathology, 75(10):937
105. Teng W L, 1997. Regeneration of Anthurium adventitious shoot using liquid or raft culture. Plant cell, Tissue and Organ cult., 49(2): 153-156
106. Uchida J Y, Aragaki M, 1982. Acremonium leaf spot of Syngonium:Nomenclature of the causal organism and chemical control. Plant Dis., 66:421-423
107. Wilson W J, Dillard H R, Deer S V, 1999. Assessment of phenotypie variability in Erwiniaste warii based on metabolic profiles. Plant Dis., 83:114-118
108. www.ag.uiuc.edu/～vista/abstracts/a616.htm
109. www.marketag.com/ma/bulletins/market/anthur.stm
110. www.oglesbytc.com/CultureInfo/anthurium.htm
111. Yik C P, 1996. Characterization of Psendomonas solanacearum strains from Singapore. Review of plant pathology, 75(1):3
112. Zoina A, Raio A, Spasiano A, 1999. First report of Anthurium bacterial blight in Italy. Journal of Plant Pathology, 3:2-3
2．蔡维藩，2002．红掌组织培养与快速繁殖．亚热带植物科学，31(3)：66-68
3．曹孜义，刘国民，1999．实用植物组织培养技术教程(修订本)．甘肃科学技术出版社：15，53
4．岑益群，蒋如敏，邓志龙等，1993．安祖花离体增殖的形态发生与理化因子效应．园艺学报，20(2)：187-192
5．陈继敏，2003．水晶花烛的组织培养与快速繁殖．植物生理学通讯，39(2)：150
6．陈晓斌，张炳欣，楼兵干等，2000．BIOLOG系统鉴定黄瓜根围促生菌的初步研究．微生物学通报，27(6)：403-407
7．陈勇，王宏毅，2002．火鹤花穿孔线虫的病原鉴定．植物检疫，16(2)：78-80
8．单芹丽，赵辉，奎丽梅等，2003．红掌的栽培与管理技术．北方园艺，(2)：38-39
9．单芹丽，赵辉，奎丽梅等，2003．红掌的栽培与管理技术．北方园艺，(2)：38-39
10．丁爱萍，张艳春，2003．红掌组织培养研究．中国花卉园艺，(5)：24-26
11．杜启兰，钟士传，2003．盆栽火鹤微体快速繁殖技术研究．中国农学通报，19(4)：106-107
12．冯瑞华，樊蕙，李力等，2000．Biolog细菌自动鉴定系统应用初探．微生物学杂志，20(2)：36-38
13．高崇省，魏亚东，王学令，1996．BIOLOG细菌自动鉴定系统操作体会．中国进出境动植检，(2)：26-27
14．郭春雷，蒋桂芝，祝伟等，2003．热带植物花卉红掌叶腐病病原菌的分离与初步鉴定．云南大学学报(自然科学版)，25(增刊)：32-34
15．韩劲，龚学坤，候继和等，1999．施肥与火鹤叶片营养状况之间的关系．北京农学院学报，14(1)：35-38
16．韩劲，龚学坤，刘悦秋等，1997．不同栽培基质及pH对火鹤幼苗生长的影响．北京农学院学报，12(3)：26-30
17．郝立新，王贤，周涤，2000．花卉植物洋桔梗和火鹤的组培快繁技术．北京农业科学，18(1)：22-23
18．浩仁塔本，余伟莅，1995．安祖花的组织培养和快速繁殖．植物生理学通讯，31(6)：433
19．何燚，莫泽莲，杨开太等，2000．观叶花烛的培育技术．广西林业科学，29(3)：151-152，157
20．胡方平，方敦煌，John Y等，1998．中国猕猴桃细菌性花腐病菌的鉴定．植物病理学报，28(2)：175-180
21．黄小光，丘银清，林雄，2001．观叶花烛的组织培养与快速繁殖．华南师范大学
学报(自然科学版)，(4)：101-102
22．姬广海，魏亚东，蒋桂芝等，2004．红掌细菌性疫病的病原菌初步鉴定．植物病理学报，34(2)：107-111
23．蒋桂芝，郭春雷，2003．西双版纳红掌细菌性疫病病原菌初步研究．热带农业科技，26(3)：10-12
24．蒋桂芝，赵丽芳，2003．西双版纳红掌栽培常见病害初报．热带农业科技，26(1)：14-15
25．蒋泽平，仲磊，李玉巧等，2000．BA与IAA及CH和YE对红掌试管苗增殖和生长的调控．林业科技开发，14(1)：20-22
26．孔宝华，吴红芝，蔡红，2002．红掌花叶病研究初报．植物保护，28(4)：26
27．兰芹英，仇玉萍，张远辉等，2003．不同红掌品种的叶片、叶柄和茎段愈伤组织的诱导及植株再生．西北植物学报，23(6)：1006-1009
28．李宏宇，赵伟东，2001．安祖花萎凋病的识别与防治．花卉，(3)：8
29．李际红，张友鹏，耿翠芳，2003．安祖花试管苗移栽成活率初探．山东林业科技，(2)：11-12
30．李静，1997．几种名贵观赏植物的快速繁殖．河北农业大学学报，20(1)：30-36
31．李孟超，2000．火鹤组培苗无糖生根培养试验．北京林业科学，18(5)：30-32
32．李招文，1990．火鹤花属叶培养育苗研究．亚热带植物通讯，(2)：53-56
33．李志芳，叶秦，赵贵林等，1997．花烛的组织培养与快速繁殖．植物生理学通讯，33(3)：197
34．林德钦，张文珠，李梅，2001．不同栽培基质对红掌组培苗生长的影响．福建农业科技，(4)：16
35．刘素青，1998．花烛病虫害．云南热作科技，21(1)：33-36
36．刘素青，赵丽芳，1999．红掌茎基腐病病原鉴定．云南农业大学学报，14(2)：128-131
37．龙雅宜，2001．几种主要切花的生产技术．西南园艺，29(1)：50-53
38．莫磊兴，李小泉，林贵美等，2003．火鹤花离体培养育苗技术研究．西南农业学报，16(1)：126-128
39．莫源敦，2003．红掌无土栽培新技术．中国花卉园艺，(5)：29
40．倪德祥，邓志龙，岑益群等，1994．紫参和安祖花不定芽人工种子的研究．复旦学报(自然科学版)，33(5)：540-546
41．欧文军，李洪立，尹俊梅，2002．红掌切花栽培中常见病虫害及防治．云南农业科技，(4)：34-37
42．潘学峰，潘梅，洪世军，2000．红掌叶片愈伤组织的诱导与植株再生．海南大学学报自然科学版，18(2)：144-149
43．彭士勇，张志涛，赵亮，2001．无土栽培安祖花的实验研究．辽宁农业职业技术学院学报，3(3)：28-30
44．P．P庇隆著[美](沈瑞祥，段道怀，周仲铭译)，1987．花木病虫害．北京：中国建筑工业出版社
45．宋波，2003．红掌奏响发展主旋律．中国花卉报，01．16
46．宋建华，童骁，陈明锴等，2002．一株高产PLC的CW-W-90-3茵的鉴定．微生物学杂志，22(2)：10-12
47．孙映波，马曼庄，段昆生等，1997．广东主要盆花无土栽培技术研究．广东农业科学，(5)：28-30
48．王进茂，郑均宝，高秀丽，2000．花烛组织培养的研究．河北林果研究，15(1)：69-74
49．王志武，张秀清，王春英，1996．大叶花烛的组培快繁与移栽管理．莱阳农学院学报，13(2)：115-118
50．肖三元，梁国平，2000．红掌组织培养及快速繁殖．云南热作科技，23(2)：12-13
51．谢关林，2000．水稻病原细菌鉴定方法的比较研究．浙江大学学报(农业与生命科学版)，26(4)：353-358
52．谢关林，金扬秀，徐传雨等，2003．我国水稻纹枯病拮抗细菌种类研究．中国生物防治，19(4)：166-170
53．谢为龙，1998．防止火鹤花细菌性叶枯病传入我国．中国进出境动植检，(4)：37-38
54．谢志成，张绍升，2003．火鹤花短尾盾线虫和细尾丝尾线虫鉴定．福建农林大学学报(自然科学版)，32(2)：185-188
55．徐公天，陆庆轩，1999．花卉病虫害防治图册．沈阳：辽宁科学技术出版社
56．徐俊林，2000．红掌的栽培与管理．花木盆景，(6)：6
57．徐明慧，林绍光，丁梦然，1993．花卉病虫害防治．北京：金盾出版社
58．许秀慧，1996．火鹤花细菌性叶枯病的认知与防治．台湾花卉园艺，(103)：26-31；(104)：29-32
59．许秀慧，林俊义，1998．台湾红掌细菌性叶枯病及其病菌对药剂之感受性．植物报护学会会刊，40(4)：409-417
60．杨光孝，李元鑫，岑益群等，1995．安祖花不定芽人工种子直播成株．复旦学报(自然科学版)，34(4)：438-444
61．杨奎妹，张和琴，邹萌等，1998．彩色马蹄莲、大叶花烛新品种引进筛选组织培养试管苗繁殖及栽培技术的研究．园林科技通讯，(6)：1-16
62．杨涛，陈德海，吴荔萍，1998．安祖花组织培养及其细胞和叶绿体发育过程的电镜观察．亚热带植物通讯，27(1)：1-7
63．曾宋君，2000．花烛的繁殖栽培．园林，(1)：21
64．张桂和，徐碧玉，彭存智等，2001．安祖花茎段培养与离体繁殖．上海农业学报，17(3)：13-16
65．张红梅，樊志和，何晓棣等，1999．河北农业科学，3(2)：5-7
66．张惠梅，文衍堂，1998．火鹤花根腐病的病原鉴定．热带作物研究，(3)：29-32
67．张荣意，谭志琼，林兴祖，2001．红掌细菌性叶枯病的症状和病原菌鉴定．热带作物学报，22(2)：48-51
68．张荣意，谭志琼，刘爱荣等，2003．黄单胞菌引致红掌疫病的症状和病原菌鉴定．热带作物学报，24(2)：81-85
69．张绍升，谢志成，2003．火鹤花衰退病诊断与检疫．植物检疫，17(5)：264-268
70．赵国祥，钱云，2002．红掌引种及适应性栽培．云南农业科技，(1)：46-47
71．赵娟，沈强，2001．红掌组培苗的炼苗要点．中国花卉园艺，(17)：30
72．赵兰勇，杜鹏，刘建华等，1999．火鹤花微体快繁试验报告．山东林业科技，(6)：1-4
73．赵秀梅，刘芬，1999．火鹤与白鹤芋组培快繁技术研究．甘肃农业科技，(6)：43-44
74．赵友福，魏亚东，高崇省等，1997．利用Biolog鉴定系统快速鉴定菜豆萎蔫病菌的研究．植物病理学报，27(2)：139-144
75．郑平，顾渝青，刘荣维，1995．三种由Erwinia spp．引起的新的花卉细菌病害．广西农业大学学报，14(4)：295-298
76．郑晓慧，戚佩坤，姜子得，2001a．广州地区天南星科观赏植物上的几种新真菌病害——Ⅰ．华南农业大学学报，22(1)：51-53
77．郑晓慧，戚佩坤，姜子得，2001b．广州地区天南星科观赏植物上的几种新真菌病害——Ⅰ．华南农业大学学报，22(2)：39-41
78．郑卓辉，柯宣东，1999．红掌无性繁殖系的组织培养技术．广东农业科学，(4)：27-28
79. Ann P J, 1992. Phytophthora diseases of ornamental plants in Araecae in Taiwan. Plant pathology Bulletin, (2):79-89
80. Aysan Y, Sahin F, 2003, First report of bacterial blight of Anthurium caused by Xanthomonas axonopodis pv. dieffenbachiae in Turkry. Journal of Plant Pathology, 7:1-2
81. Baum L, Schickedanz F, 1982. Pot anthurinms, control of root rot. Horticultral Abstract, 52(12):784
82. Behr L, 1978. Some notes on the occurrence of pythium splendens Braum Anthurium Scherzerianum hort nonschott. Bulletin, 14(3):199-203
83. Fukui R, Fukui H, Alvarez A M, 1999. Suppression of Bacterial blight by a bacterial community isolated from the guttation fluids of Anthuriums. Applied and Environmental Microbiology, 65(3): 1020-1028
84. Fukui R, Fukui H, McElhaney R, et al, 1996. Relationship between symptom development and actual sites of infection in leaves of Anthurium inoculated with a bioluminescent strain of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae. Applied and Enviromental Microbiology, 62(3): 1021-1028
85. Goto M, 1997. Fundamentals of Bacterial Plant Pathology. USA: San Diego
Academic Press, 256-260
86. Gray H, 1996. ANTHURIUM. Ball Red Book 16th Edition, Ball V., Editor, USA: Ball Publishing:353-356
87. Guo L Y, Ko W H, 1995. Survey of root rot of Anthurium. Horticultural Abstracts, 65(6): 663
88. Hara, A H, Hara T Y, 1994. Pests and diseases. Insects and mites. In: Higaki.T, Lichty J S, Moniz D, et al. Anthurium culture in Hawai'i. Univ Hawaii Res Ext Ser, 152: 11-13
89. Jones J B, Chase A R, Harris G K, 1993. Evaluation of the Biolog GN Microplate System for identification of some plant-pathogenic bacteria. Plant Dis., 77:553-558
90. Kuehnle A R, Chen F C, Sugii N, 1992. Somatic Embrogenesis and, plantlet regeneration in Anthurium andraeanura hybrids. Plant Cell Report, (11):438-442
91. Kuhne H, Leupold R, 1986. Myrothecium likes high humidity. Horticuitural Abstracts, 56(2):127
92. Kunisaki J T, 1980. In vitro propagation of Anthurium andraeanura Lind. Hortscience, 15(4):505-509
93. Natural M P, 1991. Anthurium blight in the Philippines. Horticultural Abstract, 61(7):699
94. Nishijima W T, Fujiyama D K, 1986. Bacterial blight of anthurium. Horticultural Abstracts, 56(7):580
95. Norman D J, Alvarez A M, 1989. A rapid method for the presumptive identification of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae and other Xanthomonads. Plant Disease, 73:654-658
96. Norman D J, Alvarez A M, 1994. Latent infection of in vitro Anthurium caused by Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae. Plant cell,Tissue and Organ culture, 39(1):55-61
97. Norman D J, Yuen J M F, 1999. First report of Ralstonia(Pseudornonas) solanacearum infecting pot Anthurium production in Florida. Plant Disease, 83(3):300.
98. Orlikouwski L, 1976/1977. Observations on fungi occurring on anthurium scherzerianum prace instytuty sadownistwa wskiermeivicack. Bulletin, (2): 193-196
99. Pierik RLM, 1975. Callus multiplication of Anthurium andraeanum Lind. In liquid media. Neth. J. Agr. Sci., (23):299-302
100. Prior P, Rott P, 1989. Bacterial leaf spot of Anthurium caused by a Psedomonas sp. in the French West Indies. Journal of Phytopathology, (124): 1-4,215-224
101. Sathyanarayana N, Reddy O R, Latha S, et al, 1998. Interception of Xanthomonas campestris pv. dieffenbachiae on Anthurium plants from Netherlands. Plant Dis.,
82:262
102. Shehata S A, Nishimoto M, Hamiltonm, 1991. The impact of Anthurium blight of the profitability of the industry. Horticultral Abstract, 61(7):698
103. Smalla K, Wachtendorf U, Heuer H, et al, 1998. Analysis of BIOLOG GN substrate utilization patterns by micro-bial communities. Appl. Environ. Microbiol, 64:1220-1225
104. Su C C, Leu L S, 1996. Bacterial wilt of Anthurium caused by Pseudomas solanacearum. Review of Plant Pathology, 75(10):937
105. Teng W L, 1997. Regeneration of Anthurium adventitious shoot using liquid or raft culture. Plant cell, Tissue and Organ cult., 49(2): 153-156
106. Uchida J Y, Aragaki M, 1982. Acremonium leaf spot of Syngonium:Nomenclature of the causal organism and chemical control. Plant Dis., 66:421-423
107. Wilson W J, Dillard H R, Deer S V, 1999. Assessment of phenotypie variability in Erwiniaste warii based on metabolic profiles. Plant Dis., 83:114-118
108. www.ag.uiuc.edu/～vista/abstracts/a616.htm
109. www.marketag.com/ma/bulletins/market/anthur.stm
110. www.oglesbytc.com/CultureInfo/anthurium.htm
111. Yik C P, 1996. Characterization of Psendomonas solanacearum strains from Singapore. Review of plant pathology, 75(1):3
112. Zoina A, Raio A, Spasiano A, 1999. First report of Anthurium bacterial blight in Italy. Journal of Plant Pathology, 3:2-3